| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 中英文对照及英文缩写词表 | 第11-13页 |
| 目录 | 第13-17页 |
| 第一章 前言 | 第17-35页 |
| 1 TRAIL研究概述 | 第17-24页 |
| ·TRAIL及其受体 | 第18页 |
| ·TRAIL诱导的凋亡信号传递 | 第18-19页 |
| ·TRAIL的敏感性及抗性 | 第19-20页 |
| ·TRAIL在肿瘤临床治疗中的应用 | 第20-24页 |
| 2 丝裂霉素C简介 | 第24页 |
| 3 人参多糖简介 | 第24页 |
| 4 本论文立题依据、研究内容及意义 | 第24-26页 |
| 参考文献 | 第26-35页 |
| 第二章 丝裂霉素C协同TRAIL诱导HCT116(p53-/-)结肠癌细胞凋亡的研究 | 第35-51页 |
| 1 材料、试剂与设备 | 第35-37页 |
| ·材料 | 第35页 |
| ·试剂及试剂配制 | 第35-36页 |
| ·主要仪器及设备 | 第36-37页 |
| 2 实验方法 | 第37-41页 |
| ·重组TRAIL蛋白制备 | 第37-38页 |
| ·细胞培养 | 第38页 |
| ·细胞存活实验 | 第38-39页 |
| ·结晶紫染色实验 | 第39页 |
| ·流式细胞术检测细胞凋亡实验 | 第39页 |
| ·Western-blot实验 | 第39-40页 |
| ·统计学处理 | 第40-41页 |
| 3 结果 | 第41-48页 |
| ·重组TRAIL蛋白制备 | 第41-42页 |
| ·丝裂霉素C协同TRAIL抑制HCT116(p53-/-)细胞存活 | 第42-43页 |
| ·丝裂霉素C协同TRAIL诱导HCT116(p53-/-)细胞凋亡 | 第43-44页 |
| ·丝裂霉素C协同TRAIL促进HCT116(p53-/-)细胞发生caspase依赖性的细胞凋亡 | 第44-47页 |
| ·丝裂霉素C协同TRAIL-R的竞争性抗体抑制HCT116(p53-/-)细胞的存活 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-49页 |
| 5 小结 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-51页 |
| 第三章 丝裂霉素C协同TRAIL诱导对TRAIL不敏感的HT-29结肠癌细胞凋亡的研究 | 第51-60页 |
| 1 材料、试剂与仪器 | 第51-52页 |
| ·材料 | 第51页 |
| ·试剂及试剂配制 | 第51页 |
| ·主要仪器及设备 | 第51-52页 |
| 2 实验方法 | 第52-53页 |
| ·细胞培养 | 第52页 |
| ·细胞存活实验 | 第52页 |
| ·结晶紫染色实验 | 第52页 |
| ·流式细胞术检测细胞凋亡实验 | 第52-53页 |
| ·Western-blot实验 | 第53页 |
| ·统计学处理 | 第53页 |
| 3 结果 | 第53-57页 |
| ·丝裂霉素C协同TRAIL抑制HT-29细胞的存活 | 第53-54页 |
| ·丝裂霉素C协同TRAIL诱导HT-29细胞凋亡 | 第54-55页 |
| ·丝裂霉素C协同TRAIL促进HT-29细胞发生caspase依赖性的细胞凋亡 | 第55-56页 |
| ·丝裂霉素C协同TRAIL-R的竞争性抗体抑制HT-29细胞存活 | 第56-57页 |
| 4 讨论 | 第57-58页 |
| 5 小结 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-60页 |
| 第四章 丝裂霉素C协同TRAIL诱导结肠癌细胞凋亡的机制研究 | 第60-83页 |
| 1 材料、试剂和仪器 | 第60-61页 |
| ·材料 | 第60页 |
| ·试剂及试剂配制 | 第60-61页 |
| ·主要仪器及设备 | 第61页 |
| 2 实验方法 | 第61-64页 |
| ·细胞培养 | 第61页 |
| ·细胞存活实验 | 第61-62页 |
| ·流式细胞术检测细胞表面受体表达实验 | 第62页 |
| ·RT-PCR实验 | 第62-63页 |
| ·Western-blot实验 | 第63-64页 |
| ·siRNA干扰实验 | 第64页 |
| ·统计学分析 | 第64页 |
| 3 实验结果 | 第64-80页 |
| ·丝裂霉素C对TRAIL抗性相关蛋白表达的影响 | 第64-65页 |
| ·丝裂霉素C能够上调TRAIL受体的表达 | 第65-68页 |
| ·DR5对丝裂霉素C和TRAIL协同抑制结肠癌细胞存活作用的影响 | 第68-71页 |
| ·p53,Bax对丝裂霉素C和TRAIL协同作用的影响 | 第71-72页 |
| ·Bim对丝裂霉素C和TRAIL协同作用的影响 | 第72-74页 |
| ·JNK对丝裂霉素C和TRAIL协同作用的影响 | 第74-76页 |
| ·ROS对丝裂霉素C和TRAIL协同作用的影响 | 第76-77页 |
| ·丝裂霉素C对MEK及AKT信号通路的影响 | 第77-78页 |
| ·丝裂霉素C和TRAIL不影响正常细胞的存活 | 第78-79页 |
| ·丝裂霉素C和TRAIL协同作用机制模式图 | 第79-80页 |
| 4 讨论 | 第80-81页 |
| 5 小结 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-83页 |
| 第五章 丝裂霉素C协同TRAIL抑制结肠癌裸鼠皮下移植瘤生长的实验研究 | 第83-92页 |
| 1 材料、试剂和仪器 | 第83-84页 |
| ·材料 | 第83页 |
| ·试剂及试剂配制 | 第83-84页 |
| ·主要仪器设备 | 第84页 |
| 2 实验步骤和方法 | 第84-86页 |
| ·细胞的培养 | 第84页 |
| ·裸鼠皮下移植瘤模型的构建和处理 | 第84-85页 |
| ·免疫组化 | 第85-86页 |
| ·统计学处理 | 第86页 |
| 3 实验结果 | 第86-89页 |
| ·丝裂霉素C和TRAIL对荷瘤裸鼠生长状态的影响 | 第86-87页 |
| ·丝裂霉素C和TRAIL协同抑制裸鼠皮下移植瘤生长 | 第87-89页 |
| ·丝裂霉素C和TRAIL对移植瘤中ki67表达的影响 | 第89页 |
| 4 讨论 | 第89-90页 |
| 5 小结 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-92页 |
| 第六章 人参多糖诱导结肠癌细胞HT-29凋亡的研究 | 第92-106页 |
| 1 材料、试剂和仪器 | 第92-93页 |
| ·材料 | 第92页 |
| ·试剂及试剂配制 | 第92-93页 |
| ·主要仪器及设备 | 第93页 |
| 2 实验步骤和方法 | 第93-96页 |
| ·多糖提取 | 第93-94页 |
| ·细胞培养 | 第94-95页 |
| ·细胞增殖实验 | 第95页 |
| ·流式细胞术检测细胞凋亡 | 第95页 |
| ·Western-blot实验 | 第95-96页 |
| ·统计学处理 | 第96页 |
| 3 结果 | 第96-102页 |
| ·人参多糖抑制HT-29细胞增殖 | 第96-98页 |
| ·人参多糖诱导HT-29细胞周期阻滞 | 第98-99页 |
| ·高温处理后的人参多糖抑制HT-29细胞增殖 | 第99-100页 |
| ·高温处理后的人参多糖诱导HT-29细胞周期阻滞和细胞凋亡 | 第100-101页 |
| ·高温处理后的人参多糖对HT-29细胞凋亡相关蛋白的影响 | 第101-102页 |
| 4 讨论 | 第102-103页 |
| 5 小结 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-106页 |
| 第七章 人参多糖和TRAIL的协同抗肿瘤作用初探 | 第106-113页 |
| 1 材料、试剂和仪器 | 第106-107页 |
| ·材料 | 第106页 |
| ·试剂及试剂配制 | 第106-107页 |
| ·主要仪器及设备 | 第107页 |
| 2 实验步骤和方法 | 第107-108页 |
| ·细胞培养 | 第107页 |
| ·细胞存活实验 | 第107页 |
| ·结晶紫染色实验 | 第107-108页 |
| ·Western-blot实验 | 第108页 |
| 3 结果 | 第108-110页 |
| ·人参多糖与TRAIL协同抑制HT-29细胞增殖 | 第108-109页 |
| ·高温处理后的人参多糖和TRAIL协同抑制HT-29细胞增殖 | 第109页 |
| ·MWGPA-3-HG上调TRAIL受体的表达 | 第109-110页 |
| 4 讨论 | 第110页 |
| 5 小结 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-113页 |
| 全文总结 | 第113-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
| 在读期间发表论文及著作情况 | 第117页 |
