| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-33页 |
| ·植物组织培养的定义及概况 | 第12-13页 |
| ·影响水稻愈伤组织诱导和培养的主要因素 | 第13-21页 |
| ·外植体的选择及预处理 | 第13-15页 |
| ·外植体的选择 | 第13-14页 |
| ·成熟种子的预处理 | 第14-15页 |
| ·基因型 | 第15-16页 |
| ·培养基的基本成分 | 第16-19页 |
| ·培养条件 | 第19页 |
| ·植物激素（内、外源激素） | 第19-20页 |
| ·继代培养 | 第20-21页 |
| ·植物的遗传转化研究 | 第21-28页 |
| ·植物遗传转化的主要方法 | 第21-22页 |
| ·根瘤农杆菌介导的植物遗传转化研究 | 第22-28页 |
| ·根瘤农杆菌Ti 质粒的工作过程与作用机理 | 第23-24页 |
| ·根瘤农杆菌介导的植物转基因法的优势 | 第24页 |
| ·影响根瘤农杆菌介导的植物遗传转化的主要因素 | 第24-28页 |
| ·抗性愈伤组织的分化、生根和移栽 | 第28-30页 |
| ·分化的影响因素 | 第28-29页 |
| ·生根和移栽 | 第29-30页 |
| ·籼稻遗传转化体系中存在的问题 | 第30-32页 |
| ·褐变 | 第30-31页 |
| ·污染 | 第31页 |
| ·过度含水化 | 第31-32页 |
| ·培养周期长 | 第32页 |
| ·本研究课题的目的和意义 | 第32-33页 |
| 第二章 籼稻YTA 与YTB 成熟胚愈伤组织诱导及继代培养条件的优化 | 第33-55页 |
| ·引言 | 第33页 |
| ·实验材料、仪器、试剂、方法及实验设计 | 第33-38页 |
| ·实验材料 | 第33-34页 |
| ·实验仪器 | 第34页 |
| ·实验试剂 | 第34-35页 |
| ·实验方法 | 第35-36页 |
| ·基本培养基及其成分 | 第35-36页 |
| ·培养基的准备 | 第36页 |
| ·胚性愈伤组织的诱导 | 第36页 |
| ·胚性愈伤组织的继代 | 第36页 |
| ·实验设计 | 第36-38页 |
| ·成熟种子的预处理温度试验设计 | 第36-37页 |
| ·成熟种子不同消毒灭菌方法的试验设计 | 第37页 |
| ·愈伤组织诱导培养条件试验设计 | 第37页 |
| ·愈伤组织诱导培养基的选择试验 | 第37页 |
| ·愈伤组织继代培养基的选择试验 | 第37-38页 |
| ·实验结果与分析 | 第38-52页 |
| ·不同处理温度对籼诱导率的影响 | 第38-39页 |
| ·不同消毒灭菌方法对诱导率的影响 | 第39-42页 |
| ·培养条件对诱导效果的影响 | 第42-50页 |
| ·温度、光照 | 第42-44页 |
| ·2,4-D 浓度 | 第44页 |
| ·6-BA 浓度 | 第44-45页 |
| ·活性炭、抗坏血酸、硫代硫酸钠 | 第45-47页 |
| ·小分子有机附加物 | 第47-48页 |
| ·多胺 | 第48-49页 |
| ·Fe 元素 | 第49-50页 |
| ·不同基本培养基对诱导及生长的影响 | 第50-51页 |
| ·不同基本培养基对继代生长的影响 | 第51-52页 |
| ·结论 | 第52-55页 |
| 第三章 农杆菌介导籼稻YTA 与YTB 成熟胚愈伤组织的遗传转化条件的优化 | 第55-77页 |
| ·引言 | 第55页 |
| ·实验材料与方法 | 第55-59页 |
| ·实验材料 | 第55-56页 |
| ·实验仪器 | 第56页 |
| ·实验试剂 | 第56页 |
| ·实验方法 | 第56-58页 |
| ·基本培养基及其成分 | 第56页 |
| ·培养基的准备 | 第56页 |
| ·农杆菌的侵染与抗性愈伤的筛选 | 第56-57页 |
| ·转基因植株的再生 | 第57-58页 |
| ·实验设计 | 第58-59页 |
| ·农杆菌遗传转化影响因素的实验设计 | 第58页 |
| ·抗性愈伤组织分化再生的试验设计 | 第58页 |
| ·转基因植株生根培养的试验设计 | 第58-59页 |
| ·不同条件下YTB 胚性愈伤组织内部结构变化的试验设计 | 第59页 |
| ·实验结果及分析 | 第59-74页 |
| ·农杆菌不同培养方式 | 第59-60页 |
| ·农杆菌不同菌液浓度 | 第60页 |
| ·农杆菌不同侵染方法 | 第60-61页 |
| ·共培养方式 | 第61-62页 |
| ·干燥处理方法对对水稻转化效率的影响 | 第62-63页 |
| ·不同潮霉素浓度 | 第63-64页 |
| ·不同生长素浓度 | 第64-65页 |
| ·不同 6-BA 浓度 | 第65-66页 |
| ·不同基本培养基对抗性愈伤组织分化效果的影响 | 第66页 |
| ·不同生长素浓度对YTA 与YTB 转基因植株生根的影响 | 第66页 |
| ·胚性愈伤组织的细胞学观察 | 第66-74页 |
| ·YTB 诱导培养基中添加多胺 | 第66-68页 |
| ·YTB 愈伤组织不同诱导及继代时间 | 第68-69页 |
| ·YTB 和日本晴愈伤组织侵染过程中真空负压处理 | 第69-71页 |
| ·YTB 筛选培养后的抗性愈伤组织在不同分化培养基上培养 | 第71-72页 |
| ·YTB 愈伤组织分化过程中出绿与不出绿愈伤组织 | 第72-74页 |
| ·结论 | 第74-77页 |
| ·农杆菌介导的籼稻YTA、YTB 成熟胚愈伤组织遗传转化转化体系的优化 | 第74-75页 |
| ·胚性愈伤组织的细胞学观察 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-88页 |
| 附录一：常用激素及抗生素的配制 | 第88-89页 |
| 附录二：常用培养基成分及石蜡切片观察的方法 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 在读期间发表的论文 | 第91页 |
