| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-12页 |
| 绪言 | 第12-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-23页 |
| ·羟基酪醇分离纯化方法研究进展 | 第13-17页 |
| ·前言 | 第13页 |
| ·羟基酪醇的粗提 | 第13-16页 |
| ·从液-固橄榄油废料中提取 | 第13-14页 |
| ·从橄榄压榨厂废水中提取 | 第14-15页 |
| ·从橄榄叶中提取 | 第15页 |
| ·从橄榄果汁中提取 | 第15-16页 |
| ·羟基酪醇的纯化 | 第16-17页 |
| ·有机溶剂萃取法及离子型树脂吸附 | 第16页 |
| ·非离子型树脂吸附和分子筛法 | 第16页 |
| ·酶及固定化酶法 | 第16-17页 |
| ·超临界CO_2萃取 | 第17页 |
| ·羟基酪醇的生物学活性概述 | 第17-21页 |
| ·抗菌活性 | 第17-18页 |
| ·促进新陈代谢和延缓衰老 | 第18页 |
| ·抗炎症活性 | 第18-19页 |
| ·抗癌活性 | 第19-21页 |
| ·展望 | 第21页 |
| ·本课题研究的目的、意义及主要内容 | 第21-23页 |
| ·课题来源 | 第21页 |
| ·研究目的及意义 | 第21页 |
| ·主要研究内容 | 第21-23页 |
| 第2章 羟基酪醇的分离纯化 | 第23-35页 |
| ·橄榄苦苷粗提物的盐酸水解液中分离纯化羟基酪醇 | 第23-30页 |
| ·实验材料 | 第23页 |
| ·主要化学试剂 | 第23页 |
| ·主要仪器设备 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-26页 |
| ·色谱条件 | 第23页 |
| ·HT标准曲线的制作 | 第23-24页 |
| ·橄榄苦苷的水解 | 第24页 |
| ·水解液的澄清 | 第24-25页 |
| ·澄清液的萃取 | 第25-26页 |
| ·萃取液的浓缩与HT含量检测 | 第26页 |
| ·结果与分析 | 第26-30页 |
| ·HT的标准曲线 | 第26页 |
| ·水解与澄清 | 第26-29页 |
| ·萃取与浓缩 | 第29-30页 |
| ·小结 | 第30页 |
| ·从橄榄叶的盐酸水解液中分离纯化纯化羟基酪醇 | 第30-35页 |
| ·实验材料 | 第30页 |
| ·主要化学试剂 | 第30页 |
| ·主要仪器设备 | 第30页 |
| ·实验方法 | 第30-32页 |
| ·色谱条件 | 第30页 |
| ·橄榄叶的处理及水解 | 第30-31页 |
| ·水解液的澄清 | 第31页 |
| ·树脂的处理及筛选 | 第31页 |
| ·LX-18C吸附量的筛选、洗脱及纯度检测 | 第31-32页 |
| ·用ODS柱在AKTA~(TM)purifier系统中纯化澄清液 | 第32页 |
| ·结果与分析 | 第32-34页 |
| ·水解和澄清 | 第32页 |
| ·树脂的筛选 | 第32-33页 |
| ·LX-18C吸附量的筛选、洗脱及纯度检测 | 第33页 |
| ·AKTA~(TM)purifier系统中ODS分离的效果 | 第33-34页 |
| ·小结 | 第34-35页 |
| 第3章 羟基酪醇对脑胶质HEB和脑胶质瘤U251细胞凋亡作用研究 | 第35-65页 |
| ·羟基酪醇对正常脑胶质细胞HEB凋亡作用研究 | 第35-54页 |
| ·实验材料 | 第35-36页 |
| ·细胞株 | 第35页 |
| ·主要化学试剂 | 第35-36页 |
| ·主要仪器设备 | 第36页 |
| ·实验方法 | 第36-43页 |
| ·细胞的培养 | 第36页 |
| ·细胞的复苏 | 第36-37页 |
| ·细胞的换液和传代 | 第37页 |
| ·细胞的冻存 | 第37-38页 |
| ·显微镜下观察HT对HEB细胞的形态学影响 | 第38页 |
| ·MTT法检测HT对HEB细胞增殖抑制作用 | 第38页 |
| ·DNA ladder法检测HT对HEB细胞凋亡作用 | 第38-39页 |
| ·电镜下观察HT对HEB细胞结构的影响 | 第39-40页 |
| ·流式细胞仪检测HT对HEB细胞的影响 | 第40-41页 |
| ·Western Blotting检测凋亡蛋白 | 第41-43页 |
| ·统计学分析 | 第43页 |
| ·结果与分析 | 第43-53页 |
| ·HT对HEB细胞的抑制作用 | 第43-46页 |
| ·HT作用HEB细胞形态变化 | 第46-49页 |
| ·HT对HEB细胞脱氧核糖核酸(DNA)的影响 | 第49-50页 |
| ·HT诱导HEB细胞凋亡 | 第50-52页 |
| ·HT对HEB细胞周期的影响 | 第52页 |
| ·HT对HEB细胞凋亡蛋白表达影响 | 第52-53页 |
| ·小结 | 第53-54页 |
| ·羟基酪醇对脑胶质瘤细胞U251凋亡作用研究 | 第54-65页 |
| ·实验材料 | 第54页 |
| ·细胞株 | 第54页 |
| ·主要化学试剂 | 第54页 |
| ·主要仪器设备 | 第54页 |
| ·实验方法 | 第54-55页 |
| ·显微镜下观察HT对脑胶质瘤细胞U251的形态学影响 | 第54页 |
| ·MTT法检测HT对脑胶质瘤细胞U251增殖抑制作用 | 第54页 |
| ·DNA ladder法检测HT对脑胶质瘤细胞U251凋亡作用 | 第54页 |
| ·电镜下观察HT对脑胶质瘤细胞U251结构的影响 | 第54页 |
| ·流式细胞仪检测HT对脑胶质瘤细胞U251的影响 | 第54-55页 |
| ·Western Blotting检测凋亡蛋白 | 第55页 |
| ·统计学分析 | 第55页 |
| ·结果与分析 | 第55-64页 |
| ·HT对U251细胞的抑制作用 | 第55-57页 |
| ·HT作用U251细胞形态变化 | 第57-60页 |
| ·HT对U251细胞脱氧核糖核酸(DNA)的影响 | 第60-61页 |
| ·HT诱导U251细胞凋亡 | 第61-62页 |
| ·HT对U251细胞周期的影响 | 第62页 |
| ·HT对U251细胞凋亡蛋白表达影响 | 第62-64页 |
| ·小结 | 第64-65页 |
| 第4章 总结与展望 | 第65-67页 |
| ·总结 | 第65-66页 |
| ·HT分离纯化的效果 | 第65页 |
| ·HT诱导脑胶质HEB和脑胶质瘤U251细胞的凋亡性 | 第65-66页 |
| ·展望 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 附录 缩略词 | 第74-75页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第75页 |
