| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 第1章 引言 | 第8-17页 |
| ·模式生物在发育生物学研究中的作用 | 第8页 |
| ·非洲爪蟾作为模式生物的优点 | 第8-9页 |
| ·非洲爪蟾的早期胚胎发育 | 第9-12页 |
| ·原肠运动及其调控 | 第12-14页 |
| ·Grb7/10/14 家族的研究现状 | 第14-16页 |
| ·本论文的研究目的和意义 | 第16-17页 |
| 第2章 材料和方法 | 第17-32页 |
| ·爪蟾grb10 基因的克隆和Morpholino 序列 | 第17-18页 |
| ·爪蟾grb10 基因的克隆 | 第17页 |
| ·Morpholino 序列 | 第17-18页 |
| ·质粒的构建 | 第18页 |
| ·体外转录m RNA | 第18-20页 |
| ·体外转录mRNA 所需试剂 | 第18-19页 |
| ·制备模板DNA | 第19页 |
| ·体外转录mRNA | 第19页 |
| ·纯化m RNA | 第19-20页 |
| ·胚胎，动物帽实验和Keller explants | 第20-24页 |
| ·爪蟾胚胎和体外受精 | 第20-21页 |
| ·显微注射 | 第21页 |
| ·动物帽实验 | 第21-22页 |
| ·Keller explants 试验 | 第22-23页 |
| ·斑马鱼胚胎 | 第23-24页 |
| ·原位杂交 | 第24-27页 |
| ·原位杂交试剂 | 第24页 |
| ·原位杂交探针的制备 | 第24-25页 |
| ·原位杂交 | 第25-27页 |
| ·RT-PCR | 第27-28页 |
| ·Trizol 法提取总RNA | 第27页 |
| ·反转录 | 第27页 |
| ·PCR | 第27-28页 |
| ·琼脂糖凝胶检测 | 第28页 |
| ·细胞培养和荧光素酶报告基因试验 | 第28-29页 |
| ·细胞培养 | 第28-29页 |
| ·荧光素酶报告基因试验 | 第29页 |
| ·细胞极性试验 | 第29页 |
| ·JNK 活性试验和免疫印迹试验 | 第29-32页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第32-47页 |
| ·热带爪蟾grb10 基因的克隆与时空表达谱分析 | 第32-33页 |
| ·grb10 基因的克隆 | 第32-33页 |
| ·grb10 基因的时空表达谱分析 | 第33页 |
| ·grb10 的过量表达导致原肠运动缺陷 | 第33-39页 |
| ·grb10 的过量表达导致原肠运动缺陷 | 第33-35页 |
| ·grb10 的过量表达抑制Activin 诱导的动物帽延伸 | 第35页 |
| ·grb10 的过量表达不影响细胞命运的决定 | 第35-37页 |
| ·grb10 在斑马鱼中过量表达导致原肠运动缺陷 | 第37-39页 |
| ·grb10 特异性的对于正常的原肠运动是必需的 | 第39-43页 |
| ·内源性的grb10 对于非洲爪蟾的原肠运动是必需的 | 第39页 |
| ·敲减grb10 不影响细胞命运的决定 | 第39页 |
| ·grb10-MO 导致的原肠运动缺陷的特异性 | 第39-40页 |
| ·内源性的grb10 对于Activin 诱导的动物帽延伸是必需的 | 第40-43页 |
| ·grb10 对于平面细胞极性的建立是必需的 | 第43页 |
| ·grb10 影响Wnt/Fz 诱导的JNK 激活 | 第43-47页 |
| ·grb10 对于JNK 的激活是必需的 | 第43-46页 |
| ·Grb10 影响Wnt/JNK 信号通路组分的亚细胞定位 | 第46-47页 |
| 第4章 结论 | 第47-50页 |
| ·grb10 与Wnt/PCP 信号通路 | 第47-48页 |
| ·grb10 与IGF 信号通路 | 第48页 |
| ·grb10 与其它信号通路 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第55页 |
