| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 缩略语 | 第11-12页 |
| 目录 | 第12-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-42页 |
| ·十字花科雄性不育研究进展 | 第17-32页 |
| ·十字花科雄性不育的来源和类型 | 第18-28页 |
| ·十字花科雄性不育的来源 | 第18-21页 |
| ·十字花科雄性不育的类型及遗传 | 第21-28页 |
| ·十字花科雄性不育在杂种优势中的推广与应用 | 第28-30页 |
| ·Pol CMS的应用 | 第28页 |
| ·Ogu CMS的应用 | 第28-29页 |
| ·大白菜CMS96的应用 | 第29页 |
| ·细胞核雄性不育系的利用 | 第29-30页 |
| ·十字花科雄性不育结构的电镜观察 | 第30页 |
| ·十字花科雄性不育的超微结构 | 第30页 |
| ·十字花科雄性不育的扫描结构 | 第30页 |
| ·十字花科作物雄性不育的同工酶研究 | 第30-32页 |
| ·过氧化物酶(POD) | 第31页 |
| ·酯酶(EST) | 第31页 |
| ·细胞色素氧化酶(COD) | 第31-32页 |
| ·其它种类同工酶 | 第32页 |
| ·十字花科细胞质雄性不育分子生物学研究进展 | 第32-40页 |
| ·线粒体基因组的概况 | 第32-33页 |
| ·研究线粒体基因组所用的材料和方法 | 第33-34页 |
| ·CMS不育有关的基因、嵌合基因结构 | 第34-39页 |
| ·Ogu CMS细胞质雄性不育的研究 | 第36-37页 |
| ·Pol CMS细胞质雄性不育的研究 | 第37-38页 |
| ·Nap CMS细胞质雄性不育的研究 | 第38页 |
| ·Kos CMS细胞质雄性不育的研究 | 第38页 |
| ·Mustard CMS细胞质雄性不育的研究 | 第38页 |
| ·B-tournefortii细胞质雄性不育的研究 | 第38-39页 |
| ·细胞质雄性不育分子机理研究的问题及展望 | 第39-40页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第40-42页 |
| 第二章 大白菜CMS96不育系的分子特性研究 | 第42-94页 |
| 第一节 大白菜CMS不育系和保持系的RAPD分析 | 第42-61页 |
| ·材料与方法 | 第42-46页 |
| ·材料 | 第42-43页 |
| ·方法 | 第43-46页 |
| ·大白菜核DNA的提取方法 | 第43-44页 |
| ·大白菜线粒体DNA的提取方法 | 第44-45页 |
| ·RAPD分析、片段的克隆和SCAR转化 | 第45-46页 |
| ·结果与分析 | 第46-58页 |
| ·nDNA电泳检测 | 第46页 |
| ·两种方法提取的大白菜mtDNA比较 | 第46-48页 |
| ·两种方法提取的大白菜mtDNA凝胶电泳检测 | 第46-48页 |
| ·改良Nunzia S方法提取的大白菜mtDNA在4种浓度琼脂糖的检测 | 第48页 |
| ·RAPD分析 | 第48-58页 |
| ·三种大白菜CMS不育系和保持系的RAPD分析 | 第48-50页 |
| ·特异片段的克隆、测序和同源性比较 | 第50-54页 |
| ·特异带的SCAR转化 | 第54-55页 |
| ·非特异带的SCAR转化.. | 第55-58页 |
| ·讨论 | 第58-60页 |
| ·大白菜mtDNA的提取方法 | 第58-59页 |
| ·大白菜mtDNA的RAPD分析 | 第59-60页 |
| ·小结 | 第60-61页 |
| 第二节 大白菜CMS不育系和保持系的AFLP分析 | 第61-68页 |
| ·材料与方法 | 第61-63页 |
| ·材料 | 第61页 |
| ·试验方法 | 第61-63页 |
| ·AFLP分析 | 第61-62页 |
| ·AFLP和RAPD结果聚类分析 | 第62-63页 |
| ·结果与分析 | 第63-66页 |
| ·AFLP多态性结果 | 第63页 |
| ·Pol CMS、Ogu CMS和CMS96共有的扩增产物 | 第63页 |
| ·Ogu CMS和CMS96共有的扩增产物 | 第63-64页 |
| ·Ogu CMS和CMS96各自特有的扩增产物 | 第64-65页 |
| ·三种大白菜不育系的聚类分析 | 第65-66页 |
| ·讨论 | 第66-67页 |
| ·小结 | 第67-68页 |
| 第三节 三种大白菜CMS特异序列的获得及比较分析 | 第68-94页 |
| ·材料与方法 | 第68-71页 |
| ·材料 | 第68页 |
| ·方法 | 第68-71页 |
| ·大白菜总RNA的提取 | 第69-70页 |
| ·引物设计 | 第70页 |
| ·特异引物PCR扩增 | 第70页 |
| ·RT-PCR分析 | 第70-71页 |
| ·差异带的回收、克隆和测序 | 第71页 |
| ·序列分析 | 第71页 |
| ·结果与分析 | 第71-90页 |
| ·总RNA的提取和检测 | 第71页 |
| ·七组特异引物PCR扩增产物的获得 | 第71-75页 |
| ·cox Ⅰ特异引物PCR产物的获得 | 第71-72页 |
| ·atp6特异引物PCR产物的获得 | 第72页 |
| ·atp9特异引物PCR产物的获得 | 第72-73页 |
| ·atpA特异引物PCR产物的获得 | 第73页 |
| ·orf138特异引物PCR产物的获得 | 第73-74页 |
| ·orf222特异引物PCR产物的获得 | 第74页 |
| ·orf224特异引物PCR产物的获得 | 第74-75页 |
| ·大白菜保持系和不育系的RT-PCR分析 | 第75-77页 |
| ·atp6引物RT-PCR分析 | 第75页 |
| ·atpA引物RT-PCR分析 | 第75-76页 |
| ·orf138引物RT-PCR分析 | 第76页 |
| ·orf222引物RT-PCR分析 | 第76-77页 |
| ·orf224引物RT-PCR分析 | 第77页 |
| ·特异片段的克隆、测序和同源性比较 | 第77-87页 |
| ·质粒酶切检测 | 第77-78页 |
| ·atp6引物PCR产物测序和同源性比较 | 第78-79页 |
| ·atpA引物PCR产物测序和同源性比较 | 第79页 |
| ·orf138引物PCR产物测序和同源性比较 | 第79-80页 |
| ·orf222测序和同源性比较 | 第80-87页 |
| ·orf224测序和同源性比较 | 第87页 |
| ·大白菜CMS96不育的嵌合基因区域 | 第87-89页 |
| ·多重PCR技术 | 第89-90页 |
| ·讨论 | 第90-93页 |
| ·基因调控与雄性不育 | 第90-91页 |
| ·大白菜CMS96与Ogu CMS、Pol CMS的不同 | 第91-92页 |
| ·大白菜CMS96-ORF222的性质 | 第92页 |
| ·CMS96-ORF222的可能功能 | 第92页 |
| ·鉴定大白菜三种不育系和保持系分子技术 | 第92-93页 |
| ·小结 | 第93-94页 |
| 第三章 大白菜CMS96细胞学和生化特性的研究 | 第94-125页 |
| 第一节 大白菜不育系和保持系同工酶IEF电泳分析 | 第94-109页 |
| ·材料与方法 | 第94-98页 |
| ·试验材料和仪器、设备 | 第94-95页 |
| ·试验材料 | 第94页 |
| ·试验仪器、设备 | 第94-95页 |
| ·试验方法 | 第95-98页 |
| ·取材方法 | 第95页 |
| ·IEF聚丙烯酰胺凝胶制备 | 第95页 |
| ·IEF电泳方法 | 第95页 |
| ·过氧化物酶POD的提取和染色方法 | 第95-96页 |
| ·酸性磷酸酶ACP的提取和染色方法 | 第96-97页 |
| ·酯酶EST的提取和染色方法 | 第97页 |
| ·全蛋白的提取和染色方法 | 第97-98页 |
| ·结果与分析 | 第98-107页 |
| ·POD电泳分析 | 第98-101页 |
| ·ACP电泳分析 | 第101-102页 |
| ·EST电泳分析 | 第102-105页 |
| ·全蛋白电泳分析 | 第105-107页 |
| ·蛋白提取液提取全蛋白电泳分析 | 第105-106页 |
| ·水溶液提取全蛋白电泳分析 | 第106-107页 |
| ·讨论 | 第107-108页 |
| ·小结 | 第108-109页 |
| 第二节 大白菜保持系和CMS96不育系花药电镜观察 | 第109-125页 |
| ·材料与方法 | 第109-110页 |
| ·材料 | 第109页 |
| ·方法 | 第109-110页 |
| ·透射电镜样品的制备和观察 | 第109页 |
| ·扫描电镜样品的制备和观察 | 第109-110页 |
| ·结果与分析 | 第110-123页 |
| ·透射电镜结果 | 第110-118页 |
| ·保持系花药与小孢子发育过程 | 第110页 |
| ·大白菜CMS96不育系花药与小孢子发育过程 | 第110-118页 |
| ·扫描电镜结果 | 第118-123页 |
| ·讨论 | 第123页 |
| ·小结 | 第123-125页 |
| 第四章 大白菜CMS96细胞质雄性不育系选育和应用 | 第125-146页 |
| 第一节 大白菜CMS96不育原始材料的转育 | 第125-132页 |
| ·材料与方法 | 第125-126页 |
| ·试验材料 | 第125页 |
| ·试验方法 | 第125-126页 |
| ·结果与分析 | 第126-132页 |
| ·大白菜CMS96不育系的转育研究 | 第126-128页 |
| ·三种CMS不育系和保持系花器官各结构的比较 | 第128-132页 |
| 第二节 大白菜CMS96不育系的转育研究 | 第132-136页 |
| ·材料与方法 | 第132页 |
| ·试验材料 | 第132页 |
| ·试验方法 | 第132页 |
| ·结果与分析 | 第132-136页 |
| ·大白菜CMS96不育系和保持系的比较 | 第132-136页 |
| 第三节 用CMS96进行大白菜杂交一代的选育研究 | 第136-142页 |
| ·材料与方法 | 第136页 |
| ·试验材料 | 第136页 |
| ·试验方法 | 第136页 |
| ·结果与分析 | 第136-142页 |
| ·试配CMS96不育系F1代和保持系F1代的比较 | 第136-138页 |
| ·CMS96不育系新组合和保持系F1代的比较 | 第138页 |
| ·优良大白菜雄性不育系杂交组合在生产上的应用 | 第138-142页 |
| 第四节 大白菜CMS96生产杂种一代的技术规范研究 | 第142-146页 |
| ·材料与方法 | 第142页 |
| ·试验材料 | 第142页 |
| ·试验方法 | 第142页 |
| ·结果与分析 | 第142-144页 |
| ·本章讨论 | 第144-145页 |
| ·本章小结 | 第145-146页 |
| 结论 | 第146-147页 |
| 参考文献 | 第147-160页 |
| 致谢 | 第160-161页 |
| 作者简历 | 第161页 |
