摘要 | 第1-13页 |
ABSTRACT | 第13-16页 |
序言 | 第16-27页 |
第一章 银杏内酯对小鼠和大鼠实验性脑缺血的保护作用 | 第27-39页 |
1 前言 | 第27页 |
2 实验材料 | 第27-28页 |
·药品与试剂 | 第27-28页 |
·仪器设备 | 第28页 |
·动物 | 第28页 |
3 实验方法 | 第28-31页 |
·小鼠常压密闭缺氧实验 | 第28-29页 |
·小鼠急性脑缺血实验 | 第29页 |
·断头引起的小鼠全脑缺血实验 | 第29页 |
·大鼠局灶性脑缺血实验 | 第29-31页 |
·大鼠局灶脑缺血实验模型的制备 | 第29-30页 |
·缺血后大鼠行为状态的评价 | 第30页 |
·受损脑组织缺血面积的观察与计算 | 第30-31页 |
·脑组织病理切片的制作 | 第31页 |
·脑缺血大鼠脑水含量的测定 | 第31页 |
·统计学处理 | 第31页 |
4 实验结果 | 第31-37页 |
·TG对小鼠密闭缺氧耐受力的影响 | 第31-32页 |
·TG对急性脑缺血小鼠2小时内死亡率及存活时间的影响 | 第32-33页 |
·TG对断头引起的小鼠全脑缺血的影响 | 第33-34页 |
·TG对大鼠永久性局灶脑缺血的影响 | 第34-37页 |
·对大鼠行为障碍的影响 | 第34页 |
·对大鼠脑梗塞面积的影响 | 第34页 |
·对大鼠脑组织病理状态的影响 | 第34页 |
·对脑缺血大鼠脑水含量的影响 | 第34-37页 |
5 讨论 | 第37-38页 |
6 小结 | 第38-39页 |
第二章 银杏内酯对体外培养的大鼠皮质神经细胞不同损伤模型的影响 | 第39-56页 |
1 前言 | 第39-40页 |
2 实验材料 | 第40-41页 |
·药品与试剂 | 第40-41页 |
·仪器设备 | 第41页 |
·动物 | 第41页 |
3 实验方法 | 第41-44页 |
·原代大鼠皮质神经细胞的制备与培养 | 第41-42页 |
·TG的溶解 | 第42页 |
·TG对实验性细胞损伤模型的保护作用实验方法 | 第42-44页 |
·TG对正常大鼠皮质神经细胞的影响 | 第42页 |
·谷氨酸损伤模型的制备 | 第42页 |
·过氧化氢损伤模型的制备 | 第42-43页 |
·TG对谷氨酸损伤模型的影响 | 第43页 |
·TG对过氧化氢损伤模型的影响 | 第43页 |
·TG对细胞缺糖缺氧性损伤模型的影响 | 第43-44页 |
·观察指标 | 第44页 |
·细胞形态 | 第44页 |
·MTT比色法测定细胞活力 | 第44页 |
·细胞培养上清液中乳酸脱氢酶(LDH)活性的测定 | 第44页 |
·统计学处理 | 第44页 |
4 实验结果 | 第44-50页 |
·TG对培养的大鼠皮质神经细胞的影响 | 第44-46页 |
·谷氨酸和过氧化氢对培养的皮质神经细胞的损伤作用 | 第46-48页 |
·TG对谷氨酸所致皮质神经细胞损伤的保护作用 | 第48页 |
·TG对过氧化氢所致皮质神经细胞损伤的保护作用 | 第48-49页 |
·TG对细胞缺糖缺氧性损害的保护作用 | 第49-50页 |
5 讨论 | 第50-55页 |
6 小结 | 第55-56页 |
第三章 银杏内酯对局灶性脑缺血大鼠脑组织自由基防御系统的影响 | 第56-75页 |
1 前言 | 第56页 |
2 实验材料 | 第56-58页 |
·药品与试剂 | 第56-57页 |
·仪器设备 | 第57-58页 |
·动物 | 第58页 |
3 实验方法 | 第58-63页 |
·可逆的大脑中动脉阻断手术模型的建立 | 第58页 |
·大鼠局灶性脑缺血再灌注后整体行为评分 | 第58-59页 |
·大鼠外周血清的制备 | 第59页 |
·大鼠脑组织各核团缺血后重量的测定 | 第59页 |
·大鼠脑组织10%匀浆的制备 | 第59页 |
·血清乳酸脱氢酶(LDH)活性的测定 | 第59页 |
·血清肌酸激酶(CK)活性的测定 | 第59-60页 |
·组织匀浆中过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第60页 |
·组织匀浆中谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性的测定 | 第60-61页 |
·组织匀浆中超氧化物岐化酶(SOD)活性的测定 | 第61-62页 |
·组织匀浆中谷胱甘肽(GSH)含量的测定 | 第62-63页 |
·组织匀浆中丙二醛(MDA)含量的测定 | 第63页 |
·蛋白质含量的测定 | 第63页 |
·统计学处理 | 第63页 |
4 实验结果 | 第63-69页 |
·TG对MCAO大鼠缺血再灌后行为障碍的影响 | 第63页 |
·TG对MCAO大鼠缺血再灌后缺血侧及对照侧主要易损神经核团水肿的影响 | 第63-64页 |
·TG对MCAO大鼠缺血再灌后外周血清中LDH及CK活性的影响 | 第64-66页 |
·TG对MCAO大鼠缺血再灌后缺血及对照侧皮质内CAT及GSH-Px活性的影响 | 第66-68页 |
·对MCAO大鼠缺血再灌后缺血及对照侧皮质、海马和纹状体SOD活性的影响 | 第68页 |
·对MCAO大鼠缺血再灌后缺血及对照侧皮质内还原型GSH含量的影响 | 第68页 |
·对MCAO大鼠缺血再灌后缺血及对照侧皮质、海马、纹状体MDA含量影响 | 第68-69页 |
5 讨论 | 第69-74页 |
6 小结 | 第74-75页 |
第四章 银杏内酯对培养大鼠皮质细胞bc1-2,bax和p53mRNA表达的影响 | 第75-92页 |
1 前言 | 第75-77页 |
2 实验材料 | 第77-79页 |
·药品与试剂 | 第77-78页 |
·仪器设备 | 第78-79页 |
·动物 | 第79页 |
3 实验方法 | 第79-81页 |
·原代大鼠皮质神经细胞的制备与培养 | 第79-80页 |
·总RNA的提取及其定量 | 第80页 |
·逆转录反应 | 第80页 |
·PCR扩增 | 第80-81页 |
·数据处理 | 第81页 |
4 实验结果 | 第81-88页 |
·提取的总RNA电泳图谱 | 第81-82页 |
·TG对大鼠皮质细胞bc1-2 mRNA表达的影响 | 第82-83页 |
·bc1-2 mRNA测定时,PCR体系中最佳Mg2+浓度的优化 | 第82-83页 |
·bc1-2 mRNA测定的PCR反应中,体系最佳复性温度的优化 | 第83页 |
·不同浓度的TG对细胞内bc1-2 mRNA表达的影响 | 第83页 |
·TG对大鼠皮质细胞bax mRNA表达的影响 | 第83-86页 |
·bax mRNA测定时,PCR体系中最佳Mg2+浓度的优化 | 第83-84页 |
·bax mRNA测定的PCR反应中,体系最佳复性温度的优化 | 第84-85页 |
·不同浓度的TG对皮质细胞内bax mRNA表达的影响 | 第85-86页 |
·TG对大鼠皮质细胞p53 mRNA表达的影响 | 第86-88页 |
·p53 mRNA测定时,PCR体系中最佳Mg2+浓度的优化 | 第86-87页 |
·p53 mRNA测定的PCR反应中,体系最佳复性温度的优化 | 第87页 |
·不同浓度的TG对细胞内p53 mRNA表达的影响 | 第87-88页 |
5 讨论 | 第88-91页 |
6 小结 | 第91-92页 |
参考文献 | 第92-110页 |
致谢 | 第110-111页 |
作者简历 | 第111-112页 |
博士在读期间发表的论文 | 第112-113页 |