| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-22页 |
| ·选题背景 | 第10-11页 |
| ·NIDDM 发病机理的研究进展 | 第11-17页 |
| ·氧化应激作用 | 第11-13页 |
| ·DAG/PKC 信号通路 | 第13-14页 |
| ·PKB/Akt 对糖尿病的代谢调控 | 第14-15页 |
| ·PPARγ对糖尿病的影响 | 第15-17页 |
| ·NIDDM 的药物治疗 | 第17-20页 |
| ·西医抗糖尿病药物 | 第17-19页 |
| ·中医中药抗糖尿病 | 第19页 |
| ·问题与展望 | 第19-20页 |
| ·本文的主要研究内容和意义 | 第20-22页 |
| 第二章 马齿苋多糖的提取和鉴定 | 第22-28页 |
| ·材料 | 第22-23页 |
| ·试剂 | 第22-23页 |
| ·主要试验器材 | 第23页 |
| ·方法 | 第23-24页 |
| ·马齿苋多糖的制备 | 第23页 |
| ·马齿苋多糖含量的测定(苯酚-硫酸法) | 第23-24页 |
| ·物理性质测定 | 第24页 |
| ·结果 | 第24-26页 |
| ·马齿苋多糖的提取 | 第24-26页 |
| ·马齿苋多糖理化性质的测定 | 第26页 |
| ·讨论 | 第26-27页 |
| ·本章小结 | 第27-28页 |
| 第三章 马齿苋多糖对NIDDM 小鼠降糖作用的研究 | 第28-42页 |
| ·材料 | 第28-29页 |
| ·药品和试剂 | 第28-29页 |
| ·主要试验器材 | 第29页 |
| ·试验动物 | 第29页 |
| ·方法 | 第29-31页 |
| ·NIDDM 小鼠动物模型的建立与评价 | 第29-30页 |
| ·血糖血脂测定 | 第30页 |
| ·血清胰岛素测定 | 第30页 |
| ·POP 对NIDDM 小鼠糖耐量的测定 | 第30页 |
| ·小鼠急性毒性试验 | 第30页 |
| ·动物一般情况观察 | 第30页 |
| ·样品的采集 | 第30页 |
| ·单细胞凝胶电泳法检测DNA 损伤 | 第30-31页 |
| ·数据处理 | 第31页 |
| ·结果 | 第31-37页 |
| ·NIDDM 小鼠模型建立的判定 | 第31-32页 |
| ·急性毒理试验结果 | 第32页 |
| ·小鼠一般状态的变化 | 第32页 |
| ·POP 对NIDDM 小鼠各项生理指标影响 | 第32-37页 |
| ·讨论 | 第37-40页 |
| ·NIDDM 小鼠模型的建立 | 第37页 |
| ·POP 对NIDDM 小鼠生化指标的评价 | 第37-38页 |
| ·POP 对NIDDM 小鼠抗氧化能力的评价 | 第38-39页 |
| ·POP 对NIDDM 小鼠DNA 损伤的修复 | 第39-40页 |
| ·本章小结 | 第40-42页 |
| 第四章 马齿苋多糖对糖和脂类代谢相关因子的影响 | 第42-55页 |
| ·材料 | 第43-44页 |
| ·试验动物与试剂 | 第43页 |
| ·主要试剂 | 第43页 |
| ·主要仪器设备 | 第43页 |
| ·试剂配制 | 第43-44页 |
| ·方法 | 第44-48页 |
| ·NIDDM 小鼠模型的复制 | 第44页 |
| ·试验动物的分组和处理 | 第44页 |
| ·标本收集 | 第44页 |
| ·肝、肾组织总蛋白质的提取及含量测定 | 第44-45页 |
| ·Western blot 免疫印迹法测定 PKB 表达 | 第45-47页 |
| ·PKC、PPARγ在蛋白表达水平的检测 | 第47-48页 |
| ·数据统计 | 第48页 |
| ·结果 | 第48-51页 |
| ·试验鼠肾组织中PKB 的表达量 | 第48-49页 |
| ·试验鼠肾组织中PKC 的表达量 | 第49-50页 |
| ·试验鼠肾组织中PPARγ的表达量 | 第50-51页 |
| ·讨论 | 第51-54页 |
| ·POP 对NIDDM 小鼠肾组织中PKB 表达的影响 | 第51-52页 |
| ·POP 对 NIDDM 小鼠肾组织中 PKC 表达的影响 | 第52-53页 |
| ·POP 对NIDDM 小鼠肾组织中PPARγ表达的影响 | 第53-54页 |
| ·本章小结 | 第54-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 附录1（缩略语表） | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 作者简介 | 第66页 |
