| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 引言 | 第12页 |
| 第一章 凡纳滨对虾及其早期发育和益生菌作用机制 | 第12-22页 |
| 1.1 凡纳滨对虾简介 | 第12-13页 |
| 1.2 凡纳滨对虾早期发育过程 | 第13页 |
| 1.3 凡纳滨对虾苗种培育中出现的问题 | 第13-16页 |
| 1.3.1 水质问题 | 第14-15页 |
| 1.3.2 苗种培育过程中常见的细菌性疾病 | 第15页 |
| 1.3.3 益生菌的出现 | 第15-16页 |
| 1.4 益生菌的定义及作用机制 | 第16-21页 |
| 1.4.1 益生菌的定义 | 第16-17页 |
| 1.4.2 益生菌作用机制 | 第17-20页 |
| 1.4.3 益生菌在苗种养殖过程中的应用 | 第20-21页 |
| 1.4.4 复合益生菌相较于单一菌种的优势 | 第21页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第21-22页 |
| 第二章 海水中硝化细菌及产酸细菌的分离与鉴定 | 第22-31页 |
| 2.1 材料与方法 | 第22-25页 |
| 2.1.1 实验所需培养基 | 第22-23页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.2 结果 | 第25-29页 |
| 2.2.1 筛选结果及细菌形态观察 | 第25-26页 |
| 2.2.2 16SrRNA基因序列分析与系统发育关系 | 第26-28页 |
| 2.2.3 两株细菌溶血性检测结果 | 第28-29页 |
| 2.3 讨论 | 第29-31页 |
| 2.3.1 两株海水细菌的筛选 | 第29页 |
| 2.3.2 细菌的鉴定 | 第29-30页 |
| 2.3.3 细菌溶血性分析 | 第30-31页 |
| 第三章 复合益生菌配方的筛选 | 第31-48页 |
| 3.1 材料与方法 | 第31-34页 |
| 3.1.1 各菌株间拮抗实验 | 第31-32页 |
| 3.1.2 实验对象及菌种 | 第32页 |
| 3.1.3 对虾病原检测 | 第32页 |
| 3.1.4 实验分组及操作 | 第32-34页 |
| 3.1.5 样品的采集和处理 | 第34页 |
| 3.2 结果 | 第34-44页 |
| 3.2.1 菌株间相互拮抗作用结果 | 第34-38页 |
| 3.2.2 病原检测结果 | 第38页 |
| 3.2.3 筛选实验结果与分析 | 第38-44页 |
| 3.3 讨论 | 第44-46页 |
| 3.3.1 假交替单胞菌对各个菌株有拮抗作用 | 第44-45页 |
| 3.3.2 实验室条件下复合益生菌制剂的初步筛选 | 第45-46页 |
| 3.4 小结 | 第46-48页 |
| 第四章 零换水条件下益生菌组合在凡纳滨对虾育苗生产中的应用研究 | 第48-61页 |
| 4.1 .材料与方法 | 第48-52页 |
| 4.1.1 益生菌菌株及培养条件 | 第48-49页 |
| 4.1.2 复合益生菌制备及使用 | 第49页 |
| 4.1.3 育苗条件 | 第49页 |
| 4.1.4 幼体变态率和存活率的检测 | 第49页 |
| 4.1.5 育苗水体和幼体体内可培养细菌总数和假定弧菌总数的检测 | 第49-50页 |
| 4.1.6 不同发育阶段幼体体内免疫相关基因的检测 | 第50-51页 |
| 4.1.7 仔虾体内细菌群落的高通量测序和数据分析 | 第51-52页 |
| 4.1.8 统计分析 | 第52页 |
| 4.2 .结果 | 第52-58页 |
| 4.2.1 对虾幼体的变态率和存活率 | 第52-53页 |
| 4.2.2 不同发育时期的对虾幼体体内和育苗水体中的TBC和TPVB的动态演变 | 第53-54页 |
| 4.2.3 免疫基因的相对表达量 | 第54-57页 |
| 4.2.4 仔虾体内细菌群落组成及多样性 | 第57-58页 |
| 4.3 .讨论 | 第58-61页 |
| 参考文献 | 第61-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
