酶解耦合双水相萃取黄酮类成分方法研究
| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第9-21页 |
| 1.1 黄酮类成分 | 第9-11页 |
| 1.1.1 黄酮类化合物概念 | 第9页 |
| 1.1.2 黄酮类化合物的分类 | 第9-10页 |
| 1.1.3 黄酮化合物的药理作用 | 第10-11页 |
| 1.2 酶解辅助提取法 | 第11-12页 |
| 1.2.1 酶解辅助提取的基本概念 | 第11页 |
| 1.2.2 酶解辅助提取的优势 | 第11页 |
| 1.2.3 酶解辅助提取的应用 | 第11-12页 |
| 1.3 双水相萃取技术 | 第12-19页 |
| 1.3.1 双水相体系分类 | 第12-13页 |
| 1.3.2 双水相萃取的基本原理 | 第13页 |
| 1.3.3 双水相萃取技术的优势 | 第13-14页 |
| 1.3.4 双水相萃取技术的应用 | 第14-18页 |
| 1.3.5 双水相萃取与其它技术结合应用 | 第18-19页 |
| 1.4 论文选题依据及主要研究内容 | 第19-21页 |
| 1.4.1 论文选题依据 | 第19页 |
| 1.4.2 论文主要研究内容 | 第19-21页 |
| 第2章 酶解耦合双水相萃取菟丝子黄酮类成分 | 第21-41页 |
| 2.1 引言 | 第21-22页 |
| 2.2 实验材料及仪器 | 第22-23页 |
| 2.3 实验步骤 | 第23-26页 |
| 2.3.1 双水相体系的筛选 | 第23页 |
| 2.3.2 双水相相图的绘制 | 第23页 |
| 2.3.3 超声辅助双水相萃取菟丝子黄酮 | 第23-25页 |
| 2.3.4 检测分析条件 | 第25页 |
| 2.3.5 酶解耦合双水相萃取菟丝子黄酮 | 第25页 |
| 2.3.6 菟丝子抗氧化活性研究 | 第25-26页 |
| 2.4 实验结果分析 | 第26-39页 |
| 2.4.1 双水相体系的优化 | 第26-27页 |
| 2.4.2 超声辅助双水相萃取 | 第27-30页 |
| 2.4.3 方法学验证 | 第30-33页 |
| 2.4.4 酶解耦合双水相萃取 | 第33-36页 |
| 2.4.5 不同产地菟丝子的提取结果比较 | 第36页 |
| 2.4.6 菟丝子黄酮抗氧化活性 | 第36-38页 |
| 2.4.7 不同提取方法的比较 | 第38-39页 |
| 2.5 本章小结 | 第39-41页 |
| 第3章 淫羊藿黄酮的酶解耦合双水相萃取工艺研究 | 第41-55页 |
| 3.1 引言 | 第41-42页 |
| 3.2 实验材料及仪器 | 第42-43页 |
| 3.3 实验方法 | 第43-44页 |
| 3.3.1 配制对照品溶液和样品溶液 | 第43页 |
| 3.3.2 双水相萃取过程 | 第43页 |
| 3.3.3 酶解-双水相萃取过程 | 第43-44页 |
| 3.3.4 HPLC测定 | 第44页 |
| 3.3.5 淫羊藿苷转化率的计算 | 第44页 |
| 3.3.6 酶学性质的研究 | 第44页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第44-53页 |
| 3.4.1 方法学验证 | 第44-46页 |
| 3.4.2 酶解条件的优化 | 第46-50页 |
| 3.4.3 酶学性质研究 | 第50-52页 |
| 3.4.4 不同处理方法的比较 | 第52-53页 |
| 3.5 本章小结 | 第53-55页 |
| 第4章 结论 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 学习期间主要研究成果 | 第75页 |
