摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
英文缩写词表 | 第10-11页 |
第1章 文献综述 | 第11-21页 |
1.1 被子植物花的类型 | 第11页 |
1.2 植物的性别分化 | 第11-12页 |
1.3 花器官发育模型的研究进展 | 第12-15页 |
1.3.1 花发育的ABC模型 | 第12-13页 |
1.3.2 花发育的ABCDE模型 | 第13-14页 |
1.3.3 花器官发育的四聚体模型 | 第14-15页 |
1.4 C和E类基因研究进展 | 第15-16页 |
1.4.1 C类基因的研究进展 | 第15页 |
1.4.2 E类基因的研究进展 | 第15-16页 |
1.5 MADS-box基因的研究进展 | 第16-17页 |
1.5.1 MADS-box基因的来源 | 第16-17页 |
1.5.2 MADS-box基因的结构特征 | 第17页 |
1.6 三叶木通花发育研究现状 | 第17-19页 |
1.6.1 三叶木通的分布和生物学特性 | 第17-18页 |
1.6.2 三叶木通的花发育 | 第18-19页 |
1.6.2.1 三叶木通单性花的形成 | 第18-19页 |
1.6.2.2 三叶木通花发育相关基因 | 第19页 |
1.7 本研究的目的和意义 | 第19-21页 |
第2章 三叶木通两性花到单性花发育过程的形态观察 | 第21-25页 |
2.1 引言 | 第21页 |
2.2 材料和方法 | 第21页 |
2.3 结果分析与讨论 | 第21-25页 |
2.3.1 三叶木通两性花到单性花的发育过程 | 第21-22页 |
2.3.2 小结 | 第22-25页 |
第3章 三叶木通花芽总RNA的提取 | 第25-33页 |
3.1 实验材料 | 第25页 |
3.2 主要试剂及实验准备 | 第25页 |
3.2.1 试剂 | 第25页 |
3.2.2 实验准备 | 第25页 |
3.3 实验方法 | 第25-28页 |
3.3.1 三叶木通总RNA的提取 | 第25-27页 |
3.3.2 三叶木通总RNA样品中微量DNA的去除 | 第27-28页 |
3.3.3 总RNA的检测 | 第28页 |
3.4 结果与分析 | 第28-30页 |
3.4.1 RNA完整性检测 | 第28-29页 |
3.4.2 RNA纯度与浓度检测 | 第29-30页 |
3.5 讨论 | 第30-33页 |
第4章 三叶木通AktAG1和AktSEP3基因的克隆与序列分析 | 第33-63页 |
4.1 实验材料 | 第33-34页 |
4.1.1 供试植物 | 第33页 |
4.1.2 主要试剂 | 第33页 |
4.1.3 实验所用仪器 | 第33页 |
4.1.4 引物合成和测序 | 第33-34页 |
4.2 实验方法 | 第34-43页 |
4.2.1 三叶木通AktAG1和AktSEP3基因保守区片段分离 | 第34-37页 |
4.2.2 三叶木通AktAG1和AktSEP3基因的3'RACE | 第37-40页 |
4.2.3 三叶木通AktAG1和AktSEP3基因5'端的同源克隆 | 第40-41页 |
4.2.4 序列及系统进化分析 | 第41-43页 |
4.3 实验结果与分析 | 第43-60页 |
4.3.1 三叶木通AktAG1基因的克隆 | 第43-47页 |
4.3.2 三叶木通AktSEP3基因保守区的克隆 | 第47-51页 |
4.3.3 三叶木通AktAG1和AktSEP3基因的序列及进化分析 | 第51-60页 |
4.4 讨论 | 第60-63页 |
第5章 三叶木通AktAG1和AktSEP3基因的表达分析 | 第63-69页 |
5.1 实验材料 | 第63页 |
5.2 实验试剂和仪器 | 第63页 |
5.3 实验方法 | 第63-66页 |
5.3.1 半定量RT-PCR的引物设计 | 第63-64页 |
5.3.2 三叶木通不同器官及时期总RNA的提取 | 第64页 |
5.3.3 半定量cDNA第一链的合成 | 第64-65页 |
5.3.4 半定量RT-PCR反应 | 第65-66页 |
5.4 结果与分析 | 第66-67页 |
5.5 讨论 | 第67-69页 |
5.5.1 AktAG1基因的表达式样 | 第67-68页 |
5.5.2 AktSEP3基因的表达式样 | 第68-69页 |
第6章 结论 | 第69-71页 |
参考文献 | 第71-81页 |
致谢 | 第81-83页 |
攻读硕士学位期间的研究成果 | 第83页 |