| 缩略语表(Abbeviations) | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-22页 |
| 1.1 车前子研究概况 | 第12-16页 |
| 1.1.1 车前子的品种及道地考证 | 第12页 |
| 1.1.2 车前子的化学成分研究 | 第12-13页 |
| 1.1.3 车前子的药理学研究进展 | 第13-16页 |
| 1.2 中药性味理论 | 第16-17页 |
| 1.2.1 车前子“咸”味的考证 | 第16-17页 |
| 1.2.2 车前子治疗膜性肾炎的作用与“咸”味 | 第17页 |
| 1.3 膜性肾炎的研究概况 | 第17-19页 |
| 1.3.1 现代医学对膜性肾炎的认识 | 第17页 |
| 1.3.2 传统中医对膜性肾炎的认识 | 第17-18页 |
| 1.3.3 中药治疗膜性肾炎的实验研究 | 第18-19页 |
| 1.3.4 膜性肾炎动物模型的选择 | 第19页 |
| 1.4 多糖免疫调节作用的研究进展 | 第19-22页 |
| 1.4.1 多糖对T细胞功能的影响 | 第19-20页 |
| 1.4.2 多糖对B细胞功能的影响 | 第20页 |
| 1.4.3 多糖对巨噬细胞的作用 | 第20页 |
| 1.4.4 多糖对补体系统的影响 | 第20页 |
| 1.4.5 多糖对增强红细胞免疫功能的影响 | 第20-22页 |
| 第2章 车前子性味拆分组分治疗膜性肾炎的作用研究 | 第22-54页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 实验药材 | 第22页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第22页 |
| 2.1.3 药品和试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.2.1 车前子物质基础的拆分方法研究 | 第23-24页 |
| 2.2.2 参照Border法建立大鼠膜性肾炎模型 | 第24-25页 |
| 2.2.3 动物分组及给药 | 第25页 |
| 2.3 样本采集与检测 | 第25-27页 |
| 2.3.1 24小时尿蛋白定量 | 第25页 |
| 2.3.2 血生化检查 | 第25页 |
| 2.3.3 大鼠肾指数的测定 | 第25页 |
| 2.3.4 血清抗氧化指标的测定 | 第25-26页 |
| 2.3.5 对免疫炎症细胞因子的作用 | 第26页 |
| 2.3.6 肾组织病理形态学观察 | 第26页 |
| 2.3.7 免疫组织化学染色法(PV二步法)检测 | 第26-27页 |
| 2.3.8 统计学处理 | 第27页 |
| 2.4 实验结果 | 第27-46页 |
| 2.4.1 对24h尿蛋白的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.2 对血液生化指标的影响 | 第28-32页 |
| 2.4.3 对膜性肾炎大鼠肾指数的影响 | 第32-33页 |
| 2.4.4 对血清抗氧化指标的影响 | 第33-35页 |
| 2.4.5 对血清中免疫炎性细胞因子表达的作用 | 第35-37页 |
| 2.4.6 对大鼠肾组织病理的影响 | 第37-40页 |
| 2.4.7 免疫组化染色检测结果 | 第40-46页 |
| 2.5 讨论 | 第46-52页 |
| 2.6 本章实验总结 | 第52-54页 |
| 第3章 车前子多糖组分对免疫功能调节作用的研究 | 第54-68页 |
| 3.1 实验材料 | 第54-56页 |
| 3.1.1 药品及试剂 | 第54-56页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第56页 |
| 3.1.3 实验动物 | 第56页 |
| 3.2 实验方法 | 第56-58页 |
| 3.2.1 试剂配制方法 | 第56-57页 |
| 3.2.2 常规制备脾淋巴细胞 | 第57页 |
| 3.2.3 总多糖、脱蛋白总多糖和纯多糖对小鼠脾细胞体外增殖影响 | 第57页 |
| 3.2.4 酸性纯多糖CMC还原产物对小鼠脾细胞体外增殖的影响 | 第57-58页 |
| 3.2.5 统计学处理 | 第58页 |
| 3.3 实验结果 | 第58-66页 |
| 3.3.1 总多糖、脱蛋白总多糖和纯多糖对小鼠脾细胞体外增殖影响 | 第58-62页 |
| 3.3.2 酸性纯多糖CMC还原产物对小鼠脾细胞体外增殖的影响 | 第62-66页 |
| 3.4 讨论 | 第66-68页 |
| 第4章 结论 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-74页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第74-76页 |
| 个人简历 | 第76页 |
