| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1.1 动物来源多肽研究概述 | 第11-14页 |
| 1.1.1 动物来源多肽的概念 | 第11页 |
| 1.1.2 动物来源多肽的生物活性及药用价值 | 第11-14页 |
| 1.2 多肽类药物体外合成概述 | 第14-16页 |
| 1.2.1 化学合成法 | 第14-16页 |
| 1.2.2 基因重组法 | 第16页 |
| 1.2.3 其他方法 | 第16页 |
| 1.3 鹿茸多肽研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3.1 鹿茸多肽的制备方法 | 第16-17页 |
| 1.3.2 鹿茸多肽的药理作用 | 第17-18页 |
| 1.4 结语 | 第18-19页 |
| 第2章 鹿茸多肽的设计及化学合成 | 第19-33页 |
| 2.1 课题设计 | 第19-21页 |
| 2.2 主要仪器及试剂 | 第21页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第21页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-27页 |
| 2.3.1 反应体系的优化及确定 | 第21-26页 |
| 2.3.2 肽段的合成 | 第26-27页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第27-32页 |
| 2.4.1 EL_5目标肽段的分离纯化与表征 | 第27-28页 |
| 2.4.2 DL_5目标肽段的分离纯化与表征 | 第28-29页 |
| 2.4.3 EL_(10)目标肽段的分离纯化与表征 | 第29-30页 |
| 2.4.4 DP_9目标肽段的分离纯化与表征 | 第30-31页 |
| 2.4.5 EP_(14)目标肽段的分离纯化与表征 | 第31-32页 |
| 2.5 结论 | 第32-33页 |
| 第3章 人工合成目标肽段的生物活性检测 | 第33-43页 |
| 3.1 主要仪器及试剂 | 第33-34页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第33页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第33-34页 |
| 3.1.3 细胞来源 | 第34页 |
| 3.1.4 试剂配制 | 第34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-37页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第34页 |
| 3.2.2 实验分组 | 第34页 |
| 3.2.3 CCK-8法检测细胞活性 | 第34-35页 |
| 3.2.4 Hoechst33258染色检测细胞凋亡 | 第35-36页 |
| 3.2.5 AnnexinV-FITC/PI双染流式检测细胞凋亡 | 第36页 |
| 3.2.6 统计学处理 | 第36-37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-42页 |
| 3.3.1 细胞形态学观察 | 第37-38页 |
| 3.3.2 合成目标肽段对PD细胞模型活性的影响 | 第38-40页 |
| 3.3.3 合成目标肽段对PD细胞模型凋亡的影响 | 第40-42页 |
| 3.4 结论 | 第42-43页 |
| 第4章 总结与展望 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 作者简介 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
