| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-21页 |
| 第一章 纳米载体在药物/基因传递中的应用研究进展 | 第21-31页 |
| 1 纳米缓控释药物传递体系研究 | 第21-23页 |
| ·纳米药物载体的概况 | 第21页 |
| ·制备纳米粒的方法 | 第21-22页 |
| ·纳米药物载体的优势 | 第22页 |
| ·载药纳米粒在缓控释给药系统中的应用 | 第22-23页 |
| ·展望 | 第23页 |
| 2 纳米制剂用于基因治疗 | 第23-28页 |
| ·基因治疗的概述 | 第23-24页 |
| ·理想基因转运载体的特征 | 第24页 |
| ·基因载体的研究概况 | 第24-26页 |
| ·病毒载体系统 | 第24页 |
| ·非病毒载体系统 | 第24-26页 |
| ·纳米基因载体系统 | 第26页 |
| ·纳米材料的选择 | 第26-27页 |
| ·展望 | 第27-28页 |
| 3 组织工程软骨种子细胞的定向诱导分化 | 第28-31页 |
| ·组织工程概述 | 第28页 |
| ·种子细胞定向诱导分化成软骨方法 | 第28-30页 |
| ·展望 | 第30-31页 |
| 第二章 新型多孔二氧化硅纳米粒在药物传递中的应用研究 | 第31-52页 |
| 1 水溶性药物72h高效长效新制剂的研制 | 第31-44页 |
| ·3d-SLBM的制备及体外质量评价 | 第31-37页 |
| ·实验材料 | 第31-32页 |
| ·实验方法 | 第32-34页 |
| ·实验结果 | 第34-37页 |
| ·3d-SLBM的犬体内药动学评价 | 第37-41页 |
| ·实验材料 | 第37页 |
| ·实验方法 | 第37-38页 |
| ·实验结果 | 第38-41页 |
| ·3d-SLBM的药效学评价 | 第41-44页 |
| ·实验材料 | 第41-42页 |
| ·实验方法 | 第42-43页 |
| ·实验结果 | 第43-44页 |
| 2 难溶性药物72h高效长效新制剂的研制 | 第44-50页 |
| ·3d-SLB的制备及药动学研究 | 第44-48页 |
| ·实验材料 | 第44-45页 |
| ·实验方法 | 第45-46页 |
| ·实验结果 | 第46-48页 |
| ·3d-SLB的药效评价 | 第48-50页 |
| ·实验材料 | 第48页 |
| ·实验方法 | 第48-49页 |
| ·实验结果 | 第49-50页 |
| 3 小结 | 第50-52页 |
| 第三章 载基因纳米粒的制备及其基因传递的应用研究 | 第52-71页 |
| 1 DNA-磷酸钙纳米粒的制备及其干细胞中的传递研究 | 第52-63页 |
| ·实验材料 | 第52-54页 |
| ·主要试剂 | 第52-53页 |
| ·主要仪器 | 第53页 |
| ·主要试剂的配制 | 第53-54页 |
| ·实验方法 | 第54-57页 |
| ·质粒DNA制备与纯化 | 第54页 |
| ·酶切鉴定 | 第54页 |
| ·DNA-磷酸钙纳米粒的制备 | 第54页 |
| ·细胞培养 | 第54-56页 |
| ·纳米粒与质粒的结合 | 第56页 |
| ·二维纳米基因传递系统的研究 | 第56页 |
| ·毒性评价 | 第56-57页 |
| ·干细胞细胞转染 | 第57页 |
| ·实验结果 | 第57-63页 |
| ·质粒提取结果 | 第57页 |
| ·酶切实验结果 | 第57-58页 |
| ·DNA-磷酸钙纳米粒的分离纯化 | 第58页 |
| ·DNA-磷酸钙纳米粒的表征 | 第58-60页 |
| ·干细胞培养时首次换液时间的确定 | 第60页 |
| ·二维纳米基因传递系统的研究 | 第60-62页 |
| ·MTT结果 | 第62-63页 |
| ·DNA-磷酸钙纳米粒纳米粒转染干细胞结果 | 第63页 |
| 2 多糖修饰DNA-磷酸钙纳米粒的的制备及其干细胞中的传递研究 | 第63-66页 |
| ·实验材料 | 第63-64页 |
| ·主要试剂 | 第63-64页 |
| ·仪器 | 第64页 |
| ·实验方法 | 第64-65页 |
| ·多糖修饰的DNA-磷酸钙纳米粒的制备 | 第64页 |
| ·多糖修饰的DNA-磷酸钙纳米粒的表征 | 第64页 |
| ·细胞转染 | 第64页 |
| ·统计学处理 | 第64-65页 |
| ·实验结果 | 第65-66页 |
| ·制备流程 | 第65页 |
| ·多糖修饰的DNA-磷酸钙纳米粒形态观察 | 第65页 |
| ·ELISA测定各组TGF-β1表达水平 | 第65-66页 |
| 3 钙离子化多孔二氧化硅纳米粒的的制备及其性能评价 | 第66-68页 |
| ·实验材料 | 第66页 |
| ·主要试剂 | 第66页 |
| ·仪器 | 第66页 |
| ·实验方法 | 第66-67页 |
| ·钙离子化DNA-PSNs的制备 | 第66页 |
| ·钙离子化DNA-PSNs的表征 | 第66页 |
| ·质粒结合实验 | 第66-67页 |
| ·干细胞转染 | 第67页 |
| ·结果与讨论 | 第67-68页 |
| 4 小结 | 第68-71页 |
| 第四章 三维纳米基因传递系统的构建及其在干细胞诱导分化中的应用研究 | 第71-89页 |
| 1 三维纳米基因传递系统的构建及其性能评价 | 第71-76页 |
| ·实验材料 | 第71页 |
| ·主要试剂 | 第71页 |
| ·主要仪器 | 第71页 |
| ·实验方法 | 第71-73页 |
| ·3D-NGDS的构建 | 第71-73页 |
| ·3D-NGDS的质量评价 | 第73页 |
| ·实验结果 | 第73-76页 |
| ·三种不同方法制备的支架比较 | 第73-74页 |
| ·3D-NGDS的表征 | 第74-76页 |
| 2 3D-NGDS的基因转运研究 | 第76-86页 |
| ·实验材料 | 第76页 |
| ·主要试剂 | 第76页 |
| ·主要仪器 | 第76页 |
| ·实验方法 | 第76-79页 |
| ·DNA-磷酸钙纳米粒在支架中的转染 | 第76-77页 |
| ·3D-NGDS的基因转运研究 | 第77-79页 |
| ·实验结果 | 第79-86页 |
| ·3D-NGDS中干细胞的转染 | 第79-80页 |
| ·3D-NGDS的基因转运研究 | 第80-82页 |
| ·ECM黏附性能与基因转染效率之间的关系研究 | 第82-83页 |
| ·3D-NGDS对DNA的缓释作用研究 | 第83页 |
| ·3D-NGDS对软骨再生的促进作用研究 | 第83-86页 |
| 3 二维与三维纳米基因传递系统性能比较 | 第86-87页 |
| ·转染效率的比较研究 | 第86-87页 |
| ·对软骨的再生作用 | 第87页 |
| 4 小结 | 第87-89页 |
| 第五章 全文总结 | 第89-93页 |
| 一、研究工作总结 | 第89-92页 |
| 二、本文的主要创新点 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-101页 |
| 致谢 | 第101-102页 |
| 发表论文及专利 | 第102-104页 |
