| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 引言 | 第13-17页 |
| 1 材料、仪器 | 第17-23页 |
| 1.1 主要材料与试剂 | 第17-23页 |
| 1.1.1 细胞株、细菌以及质粒来源 | 第17页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第17-18页 |
| 1.1.3 主要试剂的配制 | 第18-21页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第21-23页 |
| 2 实验方法 | 第23-31页 |
| 2.1 质粒的转化与转染 | 第23-24页 |
| 2.1.1 质粒的转化 | 第23页 |
| 2.1.2 质粒转染细胞 | 第23-24页 |
| 2.2 细胞培养 | 第24-25页 |
| 2.2.1 细胞复苏 | 第24页 |
| 2.2.2 细胞传代 | 第24页 |
| 2.2.3 细胞计数 | 第24-25页 |
| 2.2.4 细胞冻存 | 第25页 |
| 2.3 Western Blot | 第25-28页 |
| 2.3.1 提取细胞蛋白 | 第25页 |
| 2.3.2 测蛋白浓度 | 第25-26页 |
| 2.3.3 蛋白质凝胶电泳 | 第26-28页 |
| 2.4 提取细胞RNA | 第28-29页 |
| 2.5 免疫荧光 | 第29页 |
| 2.6 免疫共沉淀 | 第29-31页 |
| 3 实验结果 | 第31-41页 |
| 3.1 Hsf4增强自噬的发生 | 第31-32页 |
| 3.2 Hsf4促进雷帕霉素（Rapamycin）诱导的LC3-Ⅱ的降解 | 第32-33页 |
| 3.3 Hsf4增强溶酶体介导的游离GFP的降解 | 第33-34页 |
| 3.4 氯喹（Chloroquine）影响Hsf4介导的溶酶体活性 | 第34-36页 |
| 3.5 Hsf4增强溶酶体活性 | 第36-37页 |
| 3.6 Hsf4不影响溶酶体数量 | 第37-39页 |
| 3.7 检验alpha B-crystallin是否与ATP6VIA相互作用 | 第39-41页 |
| 4 讨论 | 第41-45页 |
| 结论 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-49页 |
| 综述 | 第49-61页 |
| 参考文献 | 第58-61页 |
| 致谢 | 第61-63页 |
| 在校期间获得的奖励和科研成果 | 第63-64页 |
