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应用CRISPR/Cas9和NgAgo两种基因编辑技术产生具有杂合突变的FOP FF-iPSCs

摘要第5-7页
abstract第7-8页
缩略词表第9-13页
第1章 引言第13-22页
    1.1 进行性纤维发育不良性骨化症(fibrodysplasia ossificans progressiva,FOP)研究概况第13-14页
        1.1.1 FOP的临床特征第13页
        1.1.2 病因和发病机制第13-14页
        1.1.3 BMP信号通路第14页
    1.2 诱导多功能干细胞的发展历程第14-16页
    1.3 CRISPR/Cas9基因编辑技术概述第16-20页
        1.3.1 高效和精确的基因组编辑技术:可编程的核酸酶第17页
        1.3.2 CRISPR/Cas9的发展第17-18页
        1.3.3 CRISPR/Cas9功能第18页
        1.3.4 CRISPR/Cas9基因编辑的应用第18-20页
    1.4 NgAgo概述第20-21页
    1.5 研究的目的与意义第21-22页
第2章 验证NgAgo能否对人类基因组进行基因编辑第22-35页
    2.1 引言第22页
    2.2 实验试剂和仪器第22-24页
        2.2.1 试剂第22-23页
        2.2.2 仪器第23-24页
    2.3 质粒第24-25页
    2.4 引物序列第25页
    2.5 实验方法第25-32页
        2.5.1 ACVR1基因gDNA的设计第25页
        2.5.2 质粒扩大培养第25页
        2.5.3 质粒抽提第25-26页
        2.5.4 nls-NgAgo-GK酶切鉴定第26页
        2.5.5 细胞培养第26-27页
        2.5.6 细胞转染与药物筛选第27-32页
    2.6 结果分析第32-34页
        2.6.1 HUVEC电转染药物筛选后结果第32页
        2.6.2 T7EI酶切结果第32-33页
        2.6.3 PCR产物克隆到pJET1.2/blunt载体后进行DNA测序第33-34页
    2.7 讨论第34-35页
第3章 ACVR1基因G328E靶位点修复模板设计及gRNA载体构建第35-44页
    3.1 引言第35页
    3.2 实验试剂和仪器第35-36页
        3.2.1 试剂第35-36页
        3.2.2 仪器第36页
    3.3 质粒第36页
    3.4 实验方法第36-41页
        3.4.1 CRISPR/Cas9gRNA靶位点与ssODNs修复模板设计第36-38页
        3.4.2 载体构建第38-40页
        3.4.3 连接产物转化第40页
        3.4.4 克隆接种与测序第40-41页
    3.5 实验结果第41-42页
    3.6 讨论第42-44页
第4章 电转染法建立ACVR1基因G328E杂合点突变的FF-iPSCs细胞第44-56页
    4.1 引言第44-45页
    4.2 实验试剂和仪器第45-46页
        4.2.1 试剂第45页
        4.2.2 仪器第45-46页
    4.3 FF-iPSCs第46页
    4.4 质粒第46页
    4.5 实验方法第46-51页
        4.5.1 FF-iPSCs细胞培养第46-47页
        4.5.2 细胞转染与药物筛选第47-49页
        4.5.3 嘌呤霉素筛选后FF-iPSCs细胞基因组的获得第49页
        4.5.4 ACVR1基因G328E周边DNA序列扩增及纯化第49-50页
        4.5.5 应用二代测序技术分析HDR介导的基因突变第50-51页
    4.6 结果分析第51-54页
        4.6.1 FF-iPSCs电转染药物筛选后结果第51-52页
        4.6.2 PCR产物纯化结果第52-53页
        4.6.3 二代测序结果分析第53-54页
    4.7 讨论第54-56页
第5章 结论第56-57页
参考文献第57-68页
致谢第68-69页
攻读学位期间的研究成果第69页

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