| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-28页 |
| 1.1 磷脂 | 第12-17页 |
| 1.1.1 磷脂概述 | 第12页 |
| 1.1.2 磷脂的种类和结构 | 第12-13页 |
| 1.1.3 磷脂的生理功能和应用 | 第13-15页 |
| 1.1.4 磷脂的改性 | 第15-17页 |
| 1.2 DHA/EPA | 第17-20页 |
| 1.2.1 DHA/EPA的分子结构 | 第17-18页 |
| 1.2.2 DHA/EPA的生理功能 | 第18-19页 |
| 1.2.3 DHA/EPA型磷脂的研究现状 | 第19-20页 |
| 1.3 Lecitase Ultra概述 | 第20-21页 |
| 1.4 固定化酶概述 | 第21-26页 |
| 1.5 本课题研究的意义和主要内容 | 第26-28页 |
| 1.5.1 本课题研究的意义 | 第26-27页 |
| 1.5.2 本课题研究的主要内容 | 第27-28页 |
| 第二章 磷脂酶A1的固定化研究 | 第28-38页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.1 主要材料与试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.2 主要仪器和设备 | 第29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-33页 |
| 2.2.1 树脂的预处理 | 第29-30页 |
| 2.2.2 固定化磷脂酶A1 的制备 | 第30页 |
| 2.2.3 蛋白吸附量的测定 | 第30-31页 |
| 2.2.4 固定化磷脂酶A1 的磷脂酶活力的测定 | 第31-32页 |
| 2.2.5 固定化磷脂酶A1 酯化活力的测定 | 第32页 |
| 2.2.6 固定化磷脂酶A1 水分含量的测定 | 第32-33页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第33-37页 |
| 2.3.1 固定化载体的筛选 | 第33-35页 |
| 2.3.2 固定化条件优化 | 第35-37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-38页 |
| 第三章 固定化磷脂酶A1催化合成DHA/EPA型磷脂 | 第38-51页 |
| 3.1 材料和仪器 | 第39-40页 |
| 3.1.1 主要材料与试剂 | 第39-40页 |
| 3.1.2 主要仪器和设备 | 第40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-42页 |
| 3.2.1 酶法催化合成DHA/EPA型磷脂 | 第40页 |
| 3.2.2 固定化酶的重复利用 | 第40-41页 |
| 3.2.3 产物的提取和分离 | 第41页 |
| 3.2.4 脂肪酸组成分析 | 第41-42页 |
| 3.2.5 核磁共振波谱仪（31PNMR）测定磷脂组成 | 第42页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第42-49页 |
| 3.3.1 比较游离磷脂酶A1 和固定化磷脂酶A1 催化酯交换反应的效果 | 第42-43页 |
| 3.3.2 固定化磷脂酶A1 催化合成DHA/EPA型磷脂 | 第43-47页 |
| 3.3.3 产物组成分析 | 第47-48页 |
| 3.3.4 固定化酶的重复利用 | 第48-49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-51页 |
| 第四章 响应面法分析影响酯交换反应的主要因素 | 第51-61页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第51-52页 |
| 4.1.1 主要材料与试剂 | 第51-52页 |
| 4.1.2 主要仪器与设备 | 第52页 |
| 4.2 实验方法 | 第52-53页 |
| 4.2.1 酶法催化合成DHA/EPA型磷脂 | 第52页 |
| 4.2.2 响应面实验设计 | 第52-53页 |
| 4.2.3 产物的提取和分离 | 第53页 |
| 4.2.4 脂肪酸组成分析 | 第53页 |
| 4.2.5 核磁共振波谱仪（31PNMR）测定磷脂组成 | 第53页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第53-60页 |
| 4.3.1 模型拟合 | 第54-55页 |
| 4.3.2 反应参数优化 | 第55-56页 |
| 4.3.3 加水量对酯交换反应的影响 | 第56-60页 |
| 4.4 本章小结 | 第60-61页 |
| 结论与展望 | 第61-63页 |
| 结论 | 第61-62页 |
| 展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 附件 | 第72页 |
