| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-24页 |
| 1.1 研究背景 | 第12-22页 |
| 1.1.1 细胞凋亡 | 第12-13页 |
| 1.1.2 细胞凋亡途径 | 第13-14页 |
| 1.1.3 细胞凋亡相关分子 | 第14-18页 |
| 1.1.4 p53及P53通路 | 第18-20页 |
| 1.1.5 人参皂苷20(S)-PPD | 第20-21页 |
| 1.1.6 结肠癌细胞相关研究 | 第21-22页 |
| 1.2 论文的研究目的和设计思路 | 第22-24页 |
| 1.2.1 论文研究的目的 | 第22页 |
| 1.2.2 论文设计思路 | 第22-24页 |
| 第二章 材料与方法 | 第24-35页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第24-26页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第24页 |
| 2.1.2 主要试剂和抗体 | 第24页 |
| 2.1.3 仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.4 溶液配制 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-35页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第26页 |
| 2.2.2 MTT比色法测定细胞生存率 | 第26-27页 |
| 2.2.3 DAPI染色 | 第27页 |
| 2.2.4 全细胞裂解液制备方法 | 第27-28页 |
| 2.2.5 线粒体及胞浆蛋白的分离和制备 | 第28-29页 |
| 2.2.6 BCA蛋白定量法 | 第29页 |
| 2.2.7 体外Caspase活力的测定 | 第29页 |
| 2.2.8 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第29-31页 |
| 2.2.9 免疫印迹分析 | 第31页 |
| 2.2.10 流式细胞术 | 第31-32页 |
| 2.2.11 线粒体膜电位分析 | 第32-33页 |
| 2.2.12 HCT-116cDNA的制备 | 第33-34页 |
| 2.2.13 半定量PCR检测mRNA的表达 | 第34-35页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第35-48页 |
| 3.1 20 (S)-PPD对人结肠癌细胞HCT-116、SW480细胞有细胞毒性 | 第35-36页 |
| 3.2 20 (S)-PPD对HCT-116、SW480细胞的毒性作用是通过诱导细胞凋亡来实现的 | 第36-40页 |
| 3.2.1 DAPI染色 | 第36-37页 |
| 3.2.2 AnnexinV与PI双染 | 第37-38页 |
| 3.2.3 体外效应Caspase-3与其特异性底物PARP的断裂情况 | 第38-40页 |
| 3.3 20 (S)-PPD诱导HCT-116、SW480细胞凋亡机制的研究 | 第40-48页 |
| 3.3.1 线粒体介导的内源型细胞凋亡途径 | 第40-43页 |
| 3.3.2 抗凋亡蛋白家族Bcl-2和IAPs的研究 | 第43-44页 |
| 3.3.3 外源型细胞凋亡途径 | 第44-48页 |
| 讨论 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 在校期间科研成果 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
