| 中文摘要 | 第4-9页 |
| abstract | 第9-14页 |
| 英文缩略词 | 第18-19页 |
| 第1章 绪论 | 第19-28页 |
| 1.1 臭氧空洞 | 第19-20页 |
| 1.1.1 概述 | 第19页 |
| 1.1.2 臭氧空洞现状 | 第19页 |
| 1.1.3 成因 | 第19-20页 |
| 1.1.4 危害 | 第20页 |
| 1.2 UVB概述及其危害 | 第20-22页 |
| 1.2.1 UVB导致的眼部损害 | 第20-21页 |
| 1.2.2 免疫系统的损伤 | 第21页 |
| 1.2.3 全身作用 | 第21页 |
| 1.2.4 皮肤损伤 | 第21-22页 |
| 1.3 UVB致皮肤损伤的机制 | 第22-23页 |
| 1.4 ROS与NF-κB | 第23-25页 |
| 1.4.1 NF-κB | 第23页 |
| 1.4.2 ROS激活NF-κB | 第23-25页 |
| 1.5 ROS与内质网应激 | 第25-26页 |
| 1.5.1 内质网及内质网应激 | 第25页 |
| 1.5.2 ROS与ERS | 第25-26页 |
| 1.5.3 NF-κB与ERS | 第26页 |
| 1.6 银杏叶提取物 | 第26-27页 |
| 1.7 小结 | 第27-28页 |
| 第2章 材料与方法 | 第28-40页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第28-31页 |
| 2.1.1 主要仪器与设备 | 第28-29页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第29-31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-39页 |
| 2.2.1 HaCaT细胞的体外培养 | 第31-32页 |
| 2.2.2 MTT实验检测细胞存活率 | 第32-33页 |
| 2.2.3 细胞的分组及处理 | 第33-34页 |
| 2.2.4 MTT法确定PDTC的处理浓度 | 第34页 |
| 2.2.5 MTT确定GBE浓度 | 第34页 |
| 2.2.6 细胞HE染色实验 | 第34-35页 |
| 2.2.7 细胞划痕实验 | 第35页 |
| 2.2.8 细胞蛋白的提取过程 | 第35-37页 |
| 2.2.9 Westernblot法检测细胞凋亡相关蛋白 | 第37-38页 |
| 2.2.10 Westernblot法检测细胞凋亡相关蛋白的表达 | 第38页 |
| 2.2.11 Westernblot法检测细胞炎性相关蛋白的表达 | 第38页 |
| 2.2.12 Westernblot法检测细胞氧化应激相关蛋白的表达.. | 第38页 |
| 2.2.13 Westernblot法检测细胞内质网应激相关蛋白的表达 | 第38-39页 |
| 2.2.14 流式细胞术检测ROS | 第39页 |
| 2.2.15 UVB剂量计算 | 第39页 |
| 2.3 统计学分析 | 第39-40页 |
| 第3章 结果 | 第40-56页 |
| 3.1 浓度和剂量的确定 | 第40-43页 |
| 3.2 细胞形态变化 | 第43-44页 |
| 3.3 细胞迁移能力变化 | 第44-47页 |
| 3.4 活性氧检测 | 第47-48页 |
| 3.5 细胞凋亡蛋白表达情况 | 第48-51页 |
| 3.6 氧化应激信号途径相关蛋白 | 第51-53页 |
| 3.7 内质网应激相关信号途径蛋白 | 第53-56页 |
| 第4章 讨论 | 第56-60页 |
| 4.1 UVB与NF-κB | 第56-58页 |
| 4.2 UVB与HaCaT凋亡 | 第58页 |
| 4.3 UVB与内质网应激 | 第58-60页 |
| 第5章 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-72页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第72-73页 |
| 作者简介 | 第72页 |
| 学习经历 | 第72页 |
| 在学期间所取得的科研成果 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
