| 附件 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 目录 | 第10-13页 |
| 缩略词表 | 第13-15页 |
| 第一章 ：文献综述 | 第15-44页 |
| 1 拟南芥光受体隐花素与光敏素信号通路研究进展 | 第15-25页 |
| 1.1 隐花素 | 第15-18页 |
| 1.2 光敏素 | 第18-20页 |
| 1.3 隐花素与光敏素信号通路下游关键调控因子 | 第20-25页 |
| 1.3.1 光形态建成负调控因子 COP1 | 第20-22页 |
| 1.3.2 光形态建成转录负调控因子 PIF | 第22-24页 |
| 1.3.3 光形态建成转录正调控因子 HY5 | 第24-25页 |
| 2 独脚金内酯信号通路 | 第25-36页 |
| 2.1 独脚金内酯简介 | 第25-27页 |
| 2.1.1 独脚金内酯调控植物与真菌的互利共生 | 第25-26页 |
| 2.1.2 独脚金内酯调控植物之间的寄生关系 | 第26-27页 |
| 2.2 独脚金内酯的合成 | 第27-29页 |
| 2.3 独脚金内酯信号通路研究进展 | 第29-30页 |
| 2.4 独脚金内酯在植物体内的运输 | 第30-31页 |
| 2.5 独脚金内酯调控植物分枝 | 第31-32页 |
| 2.6 独脚金内酯调控拟南芥幼苗形态建成 | 第32-34页 |
| 2.7 独脚金内酯与 Karrikin 的关系 | 第34-36页 |
| 3 茉莉酸信号通路调控拟南芥花色素苷的合成研究进展 | 第36-44页 |
| 3.1 茉莉酸的合成和代谢 | 第36-38页 |
| 3.2 茉莉酸与植物抗性 | 第38页 |
| 3.3 茉莉酸的信号转导 | 第38-41页 |
| 3.4 茉莉酸信号通路调控花色素苷合成的分子机制的研究进展 | 第41-44页 |
| 第二章 ：光信号与独脚金内酯信号互作调控拟南芥下胚轴伸长的分子机理研究 | 第44-74页 |
| 1 材料 | 第44-45页 |
| 1.1 植物材料 | 第44页 |
| 1.2 化学品 | 第44-45页 |
| 2 实验方法 | 第45-54页 |
| 2.1 Taq PCR 反应体系和条件 | 第45-46页 |
| 2.2 拟南芥种植 | 第46-48页 |
| 2.2.1 拟南芥无菌培养 | 第46页 |
| 2.2.2 拟南芥土培 | 第46-47页 |
| 2.2.3 拟南芥杂交 | 第47页 |
| 2.2.4 拟南芥双突变体及多突变体的杂交后代筛选 | 第47-48页 |
| 2.3 拟南芥基因组 DNA 提取 | 第48页 |
| 2.4 拟南芥下胚轴长度的测量 | 第48-49页 |
| 2.5 RT-PCR 和 qRT-PCR 检测基因的表达 | 第49-50页 |
| 2.5.1 拟南芥总 RNA 的提取 | 第49页 |
| 2.5.2 反转录反应体系及条件 | 第49页 |
| 2.5.3 RT-PCR 反应条件 | 第49-50页 |
| 2.5.4 qRT-PCR 反应体系 | 第50页 |
| 2.6 抗体制备及纯化 | 第50页 |
| 2.7 蛋白表达的 Western blot 检测 | 第50-54页 |
| 2.7.1 植物蛋白的提取 | 第50-51页 |
| 2.7.2 SDS-PAGE 蛋白凝胶电泳 | 第51-52页 |
| 2.7.3 Western blot 检测 | 第52-54页 |
| 3 实验结果 | 第54-70页 |
| 3.1 max2 突变体的鉴定 | 第54-57页 |
| 3.2 低浓度的 GR24 对下胚轴伸长的抑制作用依赖于 MAX2 | 第57页 |
| 3.3 低浓度的 GR24 抑制下胚轴的伸长依赖于光 | 第57-59页 |
| 3.4 GR24 抑制下胚轴伸长依赖于蓝光受体隐花素 | 第59-60页 |
| 3.5 GR24 抑制下胚轴伸长依赖于红光/远红光受体光敏素 | 第60-62页 |
| 3.6 GR24 在黑暗条件下抑制 cop1-4 和 pifq 的下胚轴伸长 | 第62-63页 |
| 3.7 GR24 在黑暗条件下抑制 cop1-4 下胚轴伸长的作用依赖于 MAX2 和 HY5 | 第63-64页 |
| 3.8 GR24 在黑暗条件下抑制 pifq 下胚轴伸长可能独立于 HY5 | 第64-65页 |
| 3.9 GR24 在光暗条件下组成型地促进 HY5 基因的表达 | 第65-67页 |
| 3.10 GR24 对 HY5 蛋白积累的促进作用依赖于光 | 第67-69页 |
| 3.11 GR24 对 HY5 蛋白积累的促进作用依赖于隐花素和光敏素 | 第69-70页 |
| 4 讨论 | 第70-74页 |
| 4.1 独脚金内酯信号对下胚轴伸长的调控作用依赖于隐花素和光敏素 | 第70页 |
| 4.2 COP1 和 PIF 负调控独脚金内酯信号对下胚轴伸长的抑制作用 | 第70-71页 |
| 4.3 独脚金内酯对下胚轴伸长的光依赖性调控部分与 HY5 有关 | 第71-74页 |
| 第三章 ：光信号与茉莉酸信号互作调控花色素苷积累的分子机理研究 | 第74-109页 |
| 1 材料 | 第74-76页 |
| 1.1. 植物材料 | 第74-75页 |
| 1.2 载体和菌株 | 第75页 |
| 1.2.1 菌株 | 第75页 |
| 1.2.2 质粒载体（图谱及其说明见附录） | 第75页 |
| 1.3 化学品 | 第75-76页 |
| 1.3.1 抗生素 | 第75-76页 |
| 1.3.2 其它 | 第76页 |
| 2 实验方法 | 第76-90页 |
| 2.1 载体构建 | 第76-77页 |
| 2.2 KOD PCR 反应体系及条件 | 第77页 |
| 2.3 大肠杆菌转化 | 第77-80页 |
| 2.3.1 JM107 感受态细胞制备 | 第77-79页 |
| 2.3.2 JM107 转化 | 第79页 |
| 2.3.3 碱裂解法小量提取质粒 DNA | 第79-80页 |
| 2.4 农杆菌的转化 | 第80-81页 |
| 2.4.1 GV3101 感受态细胞制备 | 第80-81页 |
| 2.4.2 GV3101 转化 | 第81页 |
| 2.5 拟南芥的种植 | 第81-83页 |
| 2.5.1 拟南芥种植及杂交 | 第81页 |
| 2.5.2 拟南芥多突变体构建及筛选 | 第81-83页 |
| 2.6 拟南芥的转化及筛选 | 第83-84页 |
| 2.6.1 农杆菌的培养 | 第83页 |
| 2.6.2 浸花法转化拟南芥 | 第83-84页 |
| 2.6.3 转化拟南芥的筛选 | 第84页 |
| 2.7 拟南芥基因组 DNA 提取 | 第84页 |
| 2.8 花色素苷含量测量 | 第84页 |
| 2.9 蛋白表达的 Western blot 检测 | 第84-85页 |
| 2.10 酵母双杂交 | 第85-88页 |
| 2.10.1 载体构建 | 第85页 |
| 2.10.2 酵母转化（一步法） | 第85-87页 |
| 2.10.3 酵母双杂交的定性分析 | 第87-88页 |
| 2.11 瞬时转化烟草激光共聚焦显微镜观察荧光共定位 | 第88-90页 |
| 2.11.1 烟草种植 | 第88页 |
| 2.11.2 农杆菌准备 | 第88-89页 |
| 2.11.3 烟草瞬时转化 | 第89页 |
| 2.11.4 瞬时转化烟草叶片的激光共聚焦显微观察 | 第89-90页 |
| 3 实验结果 | 第90-105页 |
| 3.1 在蓝光条件下 MeJA 对花色素苷积累的促进作用依赖于 CRY1 | 第90-91页 |
| 3.2 在红光条件下 MeJA 对花色素苷积累的促进作用依赖于 phyB | 第91-93页 |
| 3.3 在远红光条件下 MeJA 对花色素苷积累的促进作用依赖于 phyA | 第93-94页 |
| 3.4 COP1 抑制 MeJA 对花色素苷积累的促进作用 | 第94-96页 |
| 3.5 MYB75 在遗传上位于 COP1 的下游调控花色素苷合成 | 第96-97页 |
| 3.6 MYB75 与 HY5 调控花色素苷的遗传关系分析 | 第97-98页 |
| 3.7 MYB75 蛋白的积累受到光的正调控 | 第98-100页 |
| 3.8 在黑暗条件下 MYB75 蛋白发生依赖于 26S 蛋白酶体途径的降解 | 第100页 |
| 3.9 COP1 负调控 MYB75 蛋白的积累 | 第100-101页 |
| 3.10 MYB75 和 MYB90 在酵母中和 COP1 发生互作 | 第101-103页 |
| 3.11 MYB75 和 MYB90 与 COP1 蛋白在烟草细胞内发生共定位 | 第103-105页 |
| 4 讨论 | 第105-109页 |
| 4.1 茉莉酸信号通路调控花色素苷的积累依赖于 CRY 和 PHY 信号转导通路 | 第105-106页 |
| 4.2 COP1 通过直接调控 MYB75 的蛋白稳定性来介导与茉莉酸信号的互作 | 第106-109页 |
| 第四章 ：结论与创新点 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-128页 |
| 附录 | 第128-133页 |
| 致谢 | 第133-134页 |
| 发表论文 | 第134页 |
