| 中文摘要 | 第9-13页 |
| 英文摘要 | 第13-16页 |
| 前言 | 第17-20页 |
| 第一部 VSTM1-V2 蛋白对培养的炎症及相关细胞的影响 | 第20-51页 |
| （一） 材料和方法 | 第20-29页 |
| 1.材料 | 第20-23页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第20页 |
| 1.2 主要试剂材料 | 第20-22页 |
| 1.3 主要试剂配制 | 第22-23页 |
| 1.4 其他试剂材料 | 第23页 |
| 2.方法 | 第23-29页 |
| 2.1 HUVECs和THP-1细胞的培养 | 第23-24页 |
| 2.2 MTT 检测细胞增殖 | 第24页 |
| 2.3 HUVECs 染色 | 第24-25页 |
| 2.4 HUVECs 迁移实验 | 第25页 |
| 2.5 MPO 活性测定 | 第25页 |
| 2.6 NO水平测定 | 第25页 |
| 2.7 总RNA提取及RT-PCR检测 | 第25-27页 |
| 2.8 ELISA 方法检测细胞因子分泌和黏附分子的表达 | 第27页 |
| 2.9 Western blotting检测蛋白表达 | 第27-28页 |
| 2.10 统计学分析 | 第28-29页 |
| （二） 结果 | 第29-42页 |
| 1.VSTM1-V2蛋白对体外培养HUVECs的抑制作用 | 第29-37页 |
| 1.1 VSTM1-V2促进VSTM1基因的表达 | 第29-30页 |
| 1.2 VSTM1-V2抑制HUVECs的增殖 | 第30-31页 |
| 1.3 VSTM1-V2对HUVECs迁移的抑制作用 | 第31-32页 |
| 1.4 VSTM1-V2对HUVECs黏附分子表达抑制作用 | 第32-33页 |
| 1.5 VSTM1-V2 对炎症因子分泌的抑制作用 | 第33-35页 |
| 1.6 VSTM1-V2对HUVECs产生NO水平的影响 | 第35页 |
| 1.7 VSTM1-V2 对 NF-κB 和 MAPK8 的抑制作用 | 第35-37页 |
| 2.VSTM1-V2蛋白对体外培养THP-1细胞的作用 | 第37-42页 |
| 2.1 VSTM1-V2处理THP-1细胞镜下观察 | 第37页 |
| 2.2 VSTM1-V2及LPS处理THP-1后细胞状态观察 | 第37-38页 |
| 2.3 VSTM1-V2对THP-1细胞增殖的作用 | 第38-39页 |
| 2.4 VSTM1-V2对THP-1细胞MPO活性的影响 | 第39-40页 |
| 2.5 VSTM1-V2对THP-1分泌炎症介质的影响 | 第40-41页 |
| 2.6 VSTM1-V2对THP-1的NF-κB表达的影响 | 第41-42页 |
| （三） 讨论 | 第42-46页 |
| （四） 结论 | 第46-47页 |
| （五） 参考文献 | 第47-51页 |
| 第二部 VSTM1-V2 蛋白对急性肺炎小鼠模型的影响 | 第51-69页 |
| （一） 材料和方法 | 第51-58页 |
| 1.材料 | 第51-54页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第51页 |
| 1.2 主要试剂材料 | 第51-53页 |
| 1.3 主要试剂配制 | 第53-54页 |
| 1.4 其他试剂材料 | 第54页 |
| 2.方法 | 第54-58页 |
| 2.1 细菌培养 | 第54页 |
| 2.2 动物分组和模型建立 | 第54页 |
| 2.3 标本采集 | 第54页 |
| 2.4 肺组织HE染色 | 第54-55页 |
| 2.5 MPO 活性测定 | 第55页 |
| 2.6 iNOS 活性测定 | 第55页 |
| 2.7 Real-time qPCR 检测肺组织炎症介质表达 | 第55-57页 |
| 2.8 流式细胞术微球阵列法检测血清炎症介质表达 | 第57页 |
| 2.9 统计学分析 | 第57-58页 |
| （二） 结果 | 第58-61页 |
| 1.VSTM1-V2减轻Kp所致急性肺损伤的作用 | 第58页 |
| 2.VSTM1-V2抑制损伤肺组织MPO及iNOS活性 | 第58-59页 |
| 3.VSTM1-V2 对肺组织炎症因子转录水平的抑制作用 | 第59页 |
| 4.VSTM1-V2 对血清细胞因子的影响 | 第59-61页 |
| （三） 讨论 | 第61-64页 |
| （四） 结论 | 第64-65页 |
| （五） 参考文献 | 第65-69页 |
| 综述 | 第69-96页 |
| 参考文献 | 第79-96页 |
| 中英文缩略词表 | 第96-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
