| 缩写词 | 第3-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 前言 | 第12-30页 |
| 1.1 细胞分裂素合成及信号转导 | 第12-20页 |
| 1.1.1 细胞分裂素的合成 | 第12-15页 |
| 1.1.2 细胞分裂素的信号转导途径 | 第15-17页 |
| 1.1.3 细胞分裂素在植物体内的运输及作用 | 第17-20页 |
| 1.2 三酰甘油脂质的合成 | 第20-27页 |
| 1.2.1 脂肪酸的合成 | 第20-22页 |
| 1.2.2 Kennedy途径 | 第22-27页 |
| 1.3 长链脂肪酸影响植物维管组织内的细胞分裂素合成 | 第27-28页 |
| 1.3.1 长链脂肪酸的合成 | 第27页 |
| 1.3.2 长链脂肪酸影响维管组织内细胞分裂素的合成 | 第27-28页 |
| 1.4 植物暗下生长幼苗的光形态建成 | 第28-29页 |
| 1.5 本文研究的目的及意义 | 第29-30页 |
| 第二章 材料与方法 | 第30-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第30-33页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第30页 |
| 2.1.2 突变体库背景 | 第30-31页 |
| 2.1.3 常用的试剂和仪器 | 第31页 |
| 2.1.4 常用的药品和配方 | 第31-33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-40页 |
| 2.2.1 突变体的筛选 | 第33页 |
| 2.2.2 拟南芥的种植 | 第33页 |
| 2.2.3 甲苯胺蓝O的染色 | 第33-34页 |
| 2.2.4 Gus染色 | 第34页 |
| 2.2.5 扫描电镜观察 | 第34页 |
| 2.2.6 突变体杂交实验及遗传分析: | 第34-35页 |
| 2.2.7 Tail-PCR克隆突变基因 | 第35-38页 |
| 2.2.8 RNA的提取以及半定量PCR | 第38-40页 |
| 2.2.8.1 RNA的提取 | 第38页 |
| 2.2.8.2 基因组DNA的去除(参照TakaraDRR047A试剂盒说明书) | 第38-40页 |
| 第三章 实验结果 | 第40-61页 |
| 3.1 突变体的筛选及鉴定 | 第40-48页 |
| 3.1.1 Tail-PCR克隆目的基因及插入边界的确定 | 第41-44页 |
| 3.1.1.1 Tail-PCR克隆插入位点的特异序列 | 第41-43页 |
| 3.1.1.2 序列比对结果 | 第43-44页 |
| 3.1.2 突变体基因的显隐性分析 | 第44-45页 |
| 3.1.3 突变体的鉴定 | 第45-48页 |
| 3.1.3.1 GFC1基因的半定量PCR | 第45-47页 |
| 3.1.3.2 等位遗传杂交分析 | 第47-48页 |
| 3.2 lps16突变体的表型分析 | 第48-53页 |
| 3.2.1 lps16突变体在光照条件下地上部分对细胞分裂素的敏感性 | 第48-50页 |
| 3.2.2 突变体lps16的茎顶端分生组织对细胞分裂素的响应 | 第50-51页 |
| 3.2.3 lps16突变体在暗下生长时下胚轴对细胞分裂素的敏感性 | 第51-52页 |
| 3.2.4 突变体的甲苯胺蓝染色 | 第52-53页 |
| 3.3 突变体gpat4-2,gpat8,gpat4-2/gpat8,cyp86a2,cyp86a4,cyp77a6的初步研究 | 第53-61页 |
| 3.2.1 细胞分裂素对突变体gpat4-2,gpat8,gpat4-2/gpat8,cyp86a2,cyp86a4,cyp77a6下胚轴和根长影响的比较 | 第54-56页 |
| 3.2.2 突变体gpat4-2,gpat8,gpat4-2/gpat8,cyp86a2,cyp86a4,cyp77a6幼苗和花絮的甲苯胺蓝O染色比较 | 第56-59页 |
| 3.2.3 突变体gfc1-1,cyp86a2,cyp86a4,cyp77a6花瓣和萼片的表皮细胞的比较 | 第59-61页 |
| 第四章 讨论与展望 | 第61-65页 |
| 4.1 光照条件下细胞分裂素影响植物茎顶端分生组织生长 | 第61-62页 |
| 4.2 黑暗条件下细胞分裂素诱导的光形态建成 | 第62-63页 |
| 4.3 长链脂肪酸参与细胞分裂素和乙烯信号响应 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-75页 |
| 附录 | 第75-80页 |
| 附录一 | 第75-76页 |
| 附录二 | 第76-79页 |
| 附录三 目前正在进行的实验 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
