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来源于极端嗜热古菌Pyrococcus furiosus分子伴侣蛋白功能及其应用性研究

摘要第5-8页
Abstract第8-10页
第1章 前言第15-40页
    1.1 分子伴侣概述第15-30页
        1.1.1 hsp60的性质与功能概述第16-21页
            1.1.1.1 组Ⅱ chaperonins的整体结构第16-17页
            1.1.1.2 组Ⅱ chaperonins的变构效应第17-18页
            1.1.1.3 组Ⅱ chaperonins的构象变化以及折叠循环第18-19页
            1.1.1.4 组Ⅱ chaperonins的底物识别机制第19-20页
            1.1.1.5 组Ⅱ chaperonins的折叠机制第20-21页
        1.1.2 prefoldin的性质与功能概述第21-26页
            1.1.2.1 prefoldin的结构第21-23页
            1.1.2.2 prefoldin与底物蛋白的结合机制第23-24页
            1.1.2.3 prefoldin与组chaperonins之间的相互作用第24-25页
            1.1.2.4 prefoldin的折叠活性第25页
            1.1.2.5 prefoldin与hsp60之间的协同作用第25-26页
        1.1.3 小热休克蛋白的功能与作用机制第26-30页
            1.1.3.1 shsps的结构第26-28页
                1.1.3.1.1 shsp的α-晶体结构域的结构与性质第26页
                1.1.3.1.2 shsp的N-端结构域第26-27页
                1.1.3.1.3 shsp的C-端结构域第27-28页
            1.1.3.2 shsps的作用机制第28-29页
            1.1.3.3 shsp与其它分子伴侣的协同作用第29-30页
    1.2 α-淀粉酶概述第30-32页
        1.2.1 α-淀粉酶的结构第30页
        1.2.2 淀粉的酶转化过程第30-31页
        1.2.3 BLA的特性第31页
        1.2.4 PFA的特性第31-32页
    1.3 氨基糖苷类抗生素第32-34页
        1.3.1 翻译高保真度的意义第32-33页
        1.3.2 氨基糖苷类抗生素引起蛋白质错误翻译的作用机制第33页
        1.3.3 氨基糖苷类抗生素的摄入机制以及引起细胞死亡的机制第33-34页
    1.4 P450概述第34-38页
        1.4.1 细胞色素P450 BM3第35页
        1.4.2 细胞色素P450BM3亚家族(CYP102A)第35-36页
        1.4.3 P450BM3的晶体结构第36-37页
        1.4.4 P450 BM3的改造及应用第37-38页
    1.5 本课题的研究意义第38-40页
第2章 材料与方法第40-50页
    2.1 实验材料第40-43页
        2.1.1 菌种第40页
        2.1.2 主要仪器第40页
        2.1.3 常用试剂第40-42页
        2.1.4 质粒第42-43页
        2.1.5 引物第43页
    2.2 主要溶液第43-46页
    2.3 培养基第46页
        2.3.1 LB液体培养基第46页
        2.3.2 LB琼脂培养基第46页
        2.3.3 NZY+液体培养基第46页
    2.4 实验方法第46-50页
第3章 极端嗜热古菌分子伴侣蛋白帮助PFA进行可溶性表达的影响第50-70页
    3.1 前言第50-51页
    3.2 实验材料第51页
        3.2.1 试剂第51页
    3.3 实验方法第51-54页
        3.3.1 菌种培养第51页
        3.3.2 细胞破碎第51页
        3.3.3 耐高温淀粉酶活力测定方法(DNS法)第51-52页
            3.3.3.1 葡萄糖标准曲线的测定第51-52页
            3.3.3.2 样品酶活力测定方法第52页
        3.3.4 Folin-酚法测蛋白含量第52-54页
            3.3.4.1 蛋白标准曲线的测定第52-53页
            3.3.4.2 样品蛋白含量的测定第53-54页
        3.3.5 SDS-PAGE电泳第54页
        3.3.6 渗透物处理实验第54页
        3.3.7 热激处理实验第54页
        3.3.8 新型耐热淀粉酶(PFTA)酶活性的测定第54页
    3.4 实验结果第54-68页
        3.4.1 异源PFA在大肠杆菌中的表达第54-55页
        3.4.2 来源于极端嗜热古菌P.furiosus分子伴侣对PFA可溶性表达的影响第55-57页
        3.4.3 提高分子伴侣蛋白的表达量对PFA可溶性表达的影响第57-59页
        3.4.4 分子伴侣与PFA共表达对PFA可溶性表达的影响第59-60页
        3.4.5 prefolditi表达量高于PFA的表达量时对PFA可溶性表达水平的影口向第60-62页
        3.4.6 渗透物处理对PFA可溶性表达的影响第62-64页
        3.4.7 热激处理对PFA可溶性表达的影响第64-65页
        3.4.8 极端嗜热古菌中的分子伴侣与大肠杆菌中的分子伴侣对于PFA可溶性表达促进作用的比较第65-67页
        3.4.9 P.furiosus分子伴侣系统对相同来源的PFTA淀粉酶可溶性表达的影响第67-68页
    3.5 本章小结第68-70页
第4章 极端嗜热古菌分子伴侣帮助大肠杆菌抵御抗生素以及氧化环境的作用第70-87页
    4.1 前言第70-71页
    4.2 实验方法第71-72页
        4.2.1 菌种培养第71页
        4.2.2 生长曲线的测定第71页
        4.2.3 菌存活实验第71页
        4.2.4 经链霉素处理后各菌种细胞内的沉淀分离实验第71-72页
        4.2.5 SDS-PAGE电泳第72页
        4.2.6 最低抑制浓度实验第72页
        4.2.7 细胞内ROS含量测定实验第72页
        4.2.8 细胞膜电势的测定第72页
        4.2.9 抗氧化性实验第72页
    4.3 实验结果第72-85页
        4.3.1 帮助E.coli抵御链霉素处理的分子伴侣的筛选第73页
        4.3.2 来源于极端嗜热古菌P.furiosus的分子伴侣与来源于大肠杆菌的分子伴侣系统抵御链霉素能力的比较第73-76页
        4.3.3 低浓度链霉素处理后各菌种帮助大肠杆菌抵御氨基糖苷类抗生素的作用第76-78页
        4.3.4 各分子伴侣帮助大肠杆菌抵御高浓度链霉素的情况第78-81页
        4.3.5 过量表达分子伴侣菌种对链霉素的最低抑菌浓度第81页
        4.3.6 各菌种细胞内ROS含量第81-82页
        4.3.7 各菌种细胞膜电势的测定第82-84页
        4.3.8 分子伴侣帮助大肠杆菌抵御氧化性环境第84-85页
    4.4 本章小结第85-87页
第5章 极端嗜热古菌分子伴侣蛋白对靛蓝生物转化量的影响第87-100页
    5.1 前言第87-88页
    5.2 实验方法第88-90页
        5.2.1 Bacillus megaterium基因组DNA的抽提第88页
        5.2.2 P450BM3基因的克隆以及定点突变第88-89页
        5.2.3 菌种培养第89页
        5.2.4 细胞破碎第89页
        5.2.5 靛蓝含量的测定第89页
        5.2.6 CO-差光谱定量实验第89-90页
        5.2.7 体外酶活测定实验第90页
        5.2.8 NADPH/NADP~+测定实验第90页
        5.2.9 SDS-PAGE电泳第90页
    5.3 实验结果第90-98页
        5.3.1 P450BM3突变体的诱导表达第90-91页
        5.3.2 极端嗜热古菌分子伴侣蛋白对P450 BM3突变体合成靛蓝产量的影响第91-92页
        5.3.3 分子伴侣表达量的提高对P450 BM3突变体合成靛蓝产量的影响第92-93页
        5.3.4 两种来源的分子伴侣对P450 BM3突变体合成靛蓝产量的影响第93-94页
        5.3.5 不同底物浓度对靛蓝生物转化量的影响第94-95页
        5.3.6 CO定量以及体外酶活实验第95-97页
        5.3.7 NADPH/NADP+比率对靛蓝产量的影响第97-98页
        5.3.8 各菌种中细胞色素P450酶的表达情况第98页
    5.4 本章小结第98-100页
第6章 结论与展望第100-103页
    6.1 主要结论第100-101页
    6.2 展望第101-103页
参考文献第103-128页
攻读博士学位期间研究成果第128-129页
致谢第129-130页
卷内备考表第130页

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