| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第11-24页 |
| 1.1 山茶概述 | 第11-16页 |
| 1.1.1 山茶起源研究 | 第11-12页 |
| 1.1.2 山茶栽培简史及研究进展 | 第12-14页 |
| 1.1.3 山茶提取物研究 | 第14-15页 |
| 1.1.4 山茶生理研究 | 第15页 |
| 1.1.5 山茶种群及群落结构研究 | 第15-16页 |
| 1.2 遗传多样性研究概述 | 第16-19页 |
| 1.2.1 遗传多样性对物种保护的意义 | 第16页 |
| 1.2.2 遗传多样性的研究方法 | 第16-18页 |
| 1.2.3 山茶遗传多样性研究 | 第18-19页 |
| 1.3 CDDP分子标记技术 | 第19-23页 |
| 1.3.1 CDDP分子标记原理 | 第19-20页 |
| 1.3.2 CDDP引物的设计 | 第20页 |
| 1.3.3 CDDP分子标记技术流程 | 第20-21页 |
| 1.3.4 CDDP分子标记的特点 | 第21页 |
| 1.3.4.1 CDDP分子标记的优势 | 第21页 |
| 1.3.4.2 CDDP分子标记的应用前景 | 第21页 |
| 1.3.4.3 CDDP分子标记的应用局限 | 第21页 |
| 1.3.5 CDDP分子标记在植物研究中的应用 | 第21-23页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第23-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.2 实验仪器 | 第24-25页 |
| 2.3 主要试剂及配方 | 第25页 |
| 2.4 研究方法 | 第25-29页 |
| 2.4.1 基因组DNA的提取 | 第25-26页 |
| 2.4.2 基因组DNA的检测 | 第26页 |
| 2.4.3 CDDP引物的选择 | 第26-27页 |
| 2.4.4 CDDP-PCR反应体系的优化 | 第27-28页 |
| 2.4.5 CDDP引物的筛选 | 第28页 |
| 2.4.6 CDDP-PCR反应程序及扩增产物的电泳检测 | 第28页 |
| 2.4.7 数据处理 | 第28页 |
| 2.4.8 群落组成与结构 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-38页 |
| 3.1 基因组DNA提取 | 第29页 |
| 3.1.1 琼脂糖凝胶电泳检测 | 第29页 |
| 3.1.2 紫外分光光度检测 | 第29页 |
| 3.2 CDDP-PCR反应 | 第29-32页 |
| 3.2.1 CDDP反应体系的优化 | 第29页 |
| 3.2.2 引物筛选 | 第29-30页 |
| 3.2.3 遗传多样性分析 | 第30-31页 |
| 3.2.4 山茶各居群的遗传多样性分析 | 第31-32页 |
| 3.2.5 各居群间遗传距离和遗传相似系数分析 | 第32页 |
| 3.3 聚类分析 | 第32-35页 |
| 3.4 山茶群落组成和结构 | 第35-38页 |
| 3.4.1 群落组成及垂直结构 | 第35-36页 |
| 3.4.2 物种组成Raunkiaer频度 | 第36-37页 |
| 3.4.3 群落中各物种的重要值 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38-46页 |
| 4.1 山茶基因组DNA的提取 | 第38-39页 |
| 4.2 CDDP-PCR体系的优化 | 第39页 |
| 4.3 山东地区山茶的遗传多样性 | 第39-41页 |
| 4.4 山东地区山茶起源探讨 | 第41-43页 |
| 4.5 山茶种质资源的保护与开发利用 | 第43-46页 |
| 4.5.1 山茶种质资源的现状与保护 | 第43-45页 |
| 4.5.1.1 山茶种质资源现状 | 第43-44页 |
| 4.5.1.2 山茶种质资源保护 | 第44-45页 |
| 4.5.2 山茶种质资源的开发利用 | 第45-46页 |
| 5 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第55页 |