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流感病毒NS2蛋白与CHD3的相互作用研究及鸭肠炎病毒US10,SORF3和US2的基因特征

第一部分 流感病毒与宿主的相互作用研究第10-87页
    摘要第10-12页
    Abstract第12-13页
    缩略语第14-16页
    1 文献综述第16-38页
        1.1 流感病毒的形态和结构第16-17页
            1.1.1 流感病毒的基因组结构第17页
            1.1.2 流感病毒基因组的编码产物第17页
        1.2 流感病毒的生活史第17-35页
            1.2.1 流感病毒的侵入第18-23页
            1.2.2 流感病毒的复制和转录第23-26页
            1.2.3 流感病毒的组装和出芽第26-35页
        1.3 流感病毒蛋白与宿主蛋白的相互作用第35-38页
    2 研究目的与意义第38-39页
    3 材料与方法第39-57页
        3.1 材料第39-47页
            3.1.1 菌株,病毒株,细胞,质粒和文库第39-41页
            3.1.2 抗体第41-42页
            3.1.3 主要试剂第42页
            3.1.4 培养基第42-44页
            3.1.5 抗生素第44页
            3.1.6 引物第44-46页
            3.1.7 重要仪器和设备第46-47页
        3.2 方法第47-57页
            3.2.1 PCR第47页
            3.2.2 质粒DNA的抽提及纯化第47页
            3.2.3 大肠杆菌第47-48页
            3.2.4 定点诱变第48页
            3.2.5 酵母双杂交第48-50页
            3.2.6 原核表达与纯化第50-51页
            3.2.7 GST融合蛋白的纯化第51页
            3.2.8 SDS-PAGE电泳,GST pull-down,免疫共沉淀与Western Blot第51-53页
            3.2.9 RNA抽提第53-54页
            3.2.10 两步法RT-PCR第54页
            3.2.11 细胞的复苏,传代,冻存第54-55页
            3.2.12 细胞转染第55页
            3.2.13 哺乳动物双杂交第55页
            3.2.14 间接免疫荧光第55-56页
            3.2.15 siRNA第56页
            3.2.16 基因核苷酸和氨基酸序列分析及同源性比较第56-57页
    4 结果与分析第57-81页
        4.1 从人的胎脑cDNA文库筛选与NS2相互作用的配体第57-60页
            4.1.1 构建诱饵质粒第57页
            4.1.2 AH109酵母菌株表型验证第57-58页
            4.1.3 诱饵自激活检测第58页
            4.1.4 从人的胎脑cDNA文库筛选与NS2相互作用的配体第58页
            4.1.5 排除假阳性第58页
            4.1.6 阳性克隆的测序与同源性分析第58-60页
        4.2 哺乳动物双杂交第60-65页
            4.2.1 克隆28个候选克隆到pACT-Vector第60-61页
            4.2.2 哺乳动物双杂验证相互作用第61-62页
            4.2.3 克隆HSPBP1和CHD3s第62页
            4.2.4 哺乳动物双杂交检测NS2与HSPBP1和CHD3s的相互作用第62-63页
            4.2.5 28个猎物的GO分类第63-64页
            4.2.6 NS2与28个猎物的相互作用网络第64-65页
        4.3 免疫共沉淀验证C-CHD3与HSPBP1s和NS2的相互作用第65-67页
            4.3.1 免疫共沉淀第66-67页
            4.3.2 GST pull-down验证C-CHD3和HSPBP1s与NS2的相互作用第67页
        4.4 检测CHD4与NS2的相互作用第67-68页
            4.4.1 分析CHD3与CHD4的同源性第67-68页
            4.4.2 克隆CHD4的C末端第68页
            4.4.3 C-CHD4不与NS2相互作用第68页
        4.5 NS2与CHD3的亚细胞定位第68-70页
            4.5.1 瞬间表达NS2和C-CHD3检测NS2与C-CHD3的亚细胞定位第68-69页
            4.5.2 流感病毒感染改变C-CHD3的亚细胞定位第69-70页
            4.5.3 流感病毒感染时NS2与内源CHD3的细胞定位第70页
        4.6 NS2与C-CHD3和HSPBP1s相互作用的保守性第70-72页
            4.6.1 克隆A/WSN/1933(H1N1),A/Mexico City/001/2009(H1N1)和A/duck/Hubei/W1/2004(H9N2)的NS2第70-71页
            4.6.2 A/WSN/1933 (H1N1),A/Mexico City/001/2009(H1N1)和A/duck/Hubei/W1/2004(H9N2)的NS2与C-CHD3 HSPBP1s的相互作用第71-72页
        4.7 确定起作用的NS2结构域第72-75页
            4.7.1 克隆NS2的结构域第72页
            4.7.2 确定起作用的NS2结构域第72-73页
            4.7.3 突变核输出信号(NES)的NS2与C-CHD3和HSPBP1s的相互作用第73-75页
        4.8 寻找HSPBP1s的结构域第75-76页
            4.8.1 克隆HSPBP1s的结构域第75页
            4.8.2 HSPBPls的N端和C端结构域不与NS2相互作用第75-76页
        4.9 在HeLa细胞中检测NS2与C-CHD3和HSPBP1s的相互作用第76页
        4.10 CHD3对病毒增殖的影响第76-78页
            4.10.1 过表达C-CHD3抑制病毒增殖第77页
            4.10.2 RNA干扰内源CHD3降低病毒增殖第77-78页
        4.11 过表达全长HSPBP1s对病毒没有影响第78页
        4.12 NS2与CHD3相互作用在病毒增殖中的作用第78-81页
            4.12.1 NS2与CHD3相互作用能调控CHD3对基因表达的抑制作用第78-79页
            4.12.2 NS2与CHD3相互作用影响病毒vRNP的出核第79-81页
    5 讨论第81-86页
    6 总结第86-87页
第二部分 DEV的US10,SORF3和US2基因特征第87-113页
    摘要第87-88页
    Abstract第88-89页
    1 文献综述第89-95页
        1.1 α疱疹病毒第89-90页
            1.1.1 α疱疹病毒的基因组结构第89-90页
        1.2 鸭肠炎病毒第90-95页
            1.2.1 鸭病毒性肠炎的病原学第91页
            1.2.2 鸭病毒性肠炎的流行病学第91-92页
            1.2.3 鸭病毒性肠炎的症状和病理学变化第92页
            1.2.4 DEV的形态第92-93页
            1.2.5 DEV在体内的增殖第93页
            1.2.6 鸭肠炎病毒的检测方法第93页
            1.2.7 鸭病毒性肠炎的防治第93页
            1.2.8 鸭病毒性肠炎的分子生物学研究进展第93-95页
    2 目的与意义第95-96页
    3 材料和方法第96-101页
        3.1 材料第96-97页
            3.1.1 引物第96页
            3.1.2 病毒和质粒第96-97页
            3.1.3 试剂第97页
            3.1.4 培养基第97页
        3.2 方法第97-101页
            3.2.1 制备鸡胚成纤维细胞第97页
            3.2.2 DEV基因组提取第97-98页
            3.2.3 构建T载体DEV基因组文库第98-99页
            3.2.4 克隆US1和US10序列片段第99页
            3.2.5 确定ORF第99页
            3.2.6 信息学分析第99页
            3.2.7 RNA提取第99页
            3.2.8 3'Rapid amplification of cDNA ends (3'RACE)第99-100页
            3.2.9 定位启动子第100页
            3.2.10 进化分析第100页
            3.2.11 基因登录号第100-101页
    4 结果与分析第101-109页
        4.1 DEV的生长曲线第101页
        4.2 绘制DEV的生长曲线第101-102页
        4.3 提取DEV基因组第102页
        4.4 ORF测序结果第102-103页
        4.5 US区分析第103-104页
        4.6 US10,SORF3和US2基因的分子特征第104页
        4.7 确定加尾信号poly(A)第104-107页
        4.8 确定启动子序列第107页
        4.9 进化分析第107-109页
    5 讨论第109-111页
    6 总结第111-113页
参考文献第113-135页
简历(Curriculum Vitae)第135-136页
发表的主要论文第136-137页
致谢第137-138页

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