| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 前言 | 第11-21页 |
| 1 文献综述 | 第11-20页 |
| 1.1. 马齿苋形态特征及资源分布 | 第11-12页 |
| 1.1.1 形态特征 | 第11页 |
| 1.1.2 资源分布及分类研究 | 第11-12页 |
| 1.2 马齿苋研究现状 | 第12-14页 |
| 1.2.1 食用价值研究 | 第12页 |
| 1.2.2 药用价值研究 | 第12-13页 |
| 1.2.3 生理方面研究 | 第13-14页 |
| 1.2.4 育种与栽培研究 | 第14页 |
| 1.3 马齿苋B染色体的细胞学研究 | 第14-15页 |
| 1.4 药用种质资源遗传多样性的研究现状 | 第15-20页 |
| 1.4.1 种质遗传多样性概念 | 第15-16页 |
| 1.4.2 药用种质资源遗传多样性研究的意义 | 第16-17页 |
| 1.4.3 药用植物种植资源遗传多样性研究现状 | 第17-20页 |
| 2 本研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 第二章 不同居群马齿苋细胞学研究及FISH分析 | 第21-44页 |
| 1.材料收集 | 第21-22页 |
| 2.方法 | 第22-24页 |
| 2.1 染色体标本制备方法 | 第22-23页 |
| 2.1.1 材料培养方法 | 第22页 |
| 2.1.2 制片方法 | 第22-23页 |
| 2.2.减数分裂观察方法 | 第23页 |
| 2.3 花粉粒育性观察方法 | 第23页 |
| 2.4 染色体核型分析 | 第23-24页 |
| 2.5 原位杂交方法 | 第24页 |
| 2.6 数据处理及分析 | 第24页 |
| 3.结果与分析 | 第24-41页 |
| 3.1 染色体标本制备方法的优化 | 第24-26页 |
| 3.1.1 不同材料培养方法对获得中期分裂相细胞数的影响 | 第24页 |
| 3.1.2 不同预处理时间对中期染色体处理效果的影响 | 第24-25页 |
| 3.1.3 不同制片方法对中期染色体处理效果的影响 | 第25-26页 |
| 3.2 不同居群马齿苋染色体数目统计和4个居群核型分析 | 第26-38页 |
| 3.2.1 从所有供试居群马齿觅的根尖体细胞 | 第26-29页 |
| 3.2.2 M20居群马齿苋核型分析 | 第29-30页 |
| 3.2.3 M7居群马齿苋核型分析 | 第30-32页 |
| 3.2.4 M13居群马齿苋核型分析 | 第32-34页 |
| 3.2.5 M15居群马齿苋核型分析 | 第34-36页 |
| 3.2.6 大花马齿苋核型分析 | 第36-37页 |
| 3.2.7 马齿苋不同居群间染色体的变异 | 第37-38页 |
| 3.3 马齿苋花粉母细胞减数分裂过程观察 | 第38-40页 |
| 3.4 马齿苋花粉粒育性观察结果 | 第40页 |
| 3.5 FISH结果与分析 | 第40-41页 |
| 3.5.1 45S和5SrDNA在马齿苋有丝分裂中期染色体上的定位 | 第40-41页 |
| 3.5.2 45S和5SrDNA在大花马齿苋有丝分裂中期染色体上的定位 | 第41页 |
| 4.讨论与结论 | 第41-44页 |
| 第三章 不同居群马齿苋生理指标及生物产量的测定 | 第44-53页 |
| 1.材料和方法 | 第44页 |
| 1.1 材料 | 第44页 |
| 1.2 方法 | 第44页 |
| 1.2.1 马齿苋茎叶蛋白质提取和含量测定 | 第44页 |
| 1.2.2 马齿苋多糖提取及含量测定 | 第44页 |
| 1.2.3 马齿苋黄酮类化合物提取及含量测定 | 第44页 |
| 1.2.4 马齿苋不同居群生物产量测定 | 第44页 |
| 2.结果和分析 | 第44-50页 |
| 2.1 不同居群马齿苋蛋白质提取和测定 | 第45-46页 |
| 2.2 不同居群马齿苋多糖的提取和测定 | 第46-48页 |
| 2.3.不同居群马齿苋黄酮类化合物的提取和测定 | 第48-49页 |
| 2.4 马齿苋不同居群生物产量测定 | 第49-50页 |
| 3 讨论与结论 | 第50-53页 |
| 3.1 不同居群马齿苋蛋白质含量及动态变化 | 第50-51页 |
| 3.2 不同居群马齿苋多糖含量和动态变化 | 第51页 |
| 3.3 不同居群马齿苋黄酮含量及动态变化 | 第51-52页 |
| 3.4 不同居群马齿苋生物产量的测定 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 附图 | 第60-63页 |
| 附录 | 第63页 |
