| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 第一章 前言 | 第10-22页 |
| 1.1 糖尿病定义及其类型 | 第10页 |
| 1.2 2型糖尿病发病机理 | 第10-15页 |
| 1.2.1 胰岛β细胞功能障碍(β-cell failure) | 第11-13页 |
| 1.2.1.1 β细胞功能障碍细胞机制 | 第12-13页 |
| 1.2.2 胰岛β细胞数量减少 | 第13页 |
| 1.2.3 胰岛素抵抗(Insulin Resistance,IR) | 第13-15页 |
| 1.2.3.1 IR细胞机制 | 第14-15页 |
| 1.2.4 遗传因素(Genetic factor) | 第15页 |
| 1.2.5 环境因素(Environment) | 第15页 |
| 1.3 黄酮类化合物对2型糖尿病的防治 | 第15-19页 |
| 1.3.1 黄酮类化合物简介 | 第15-17页 |
| 1.3.2 黄酮类化合物对糖尿病的防治 | 第17-19页 |
| 1.3.2.1 黄酮类化合物对胰岛素分泌的影响 | 第17页 |
| 1.3.2.2 黄酮类化合物的类胰岛素作用 | 第17页 |
| 1.3.2.3 黄酮类化合物改善胰岛素敏感性作用 | 第17-18页 |
| 1.3.2.4 黄酮类化合物抑制α-萄糖苷酶的作用 | 第18页 |
| 1.3.2.5 黄酮类化合物抑制醛糖还原酶的作用 | 第18-19页 |
| 1.4 立题依据及主要研究内容 | 第19-22页 |
| 1.4.1 课题的立题依据 | 第19-20页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第20-22页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第22-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-25页 |
| 2.1.1 常用实验试剂及耗材 | 第22-23页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第23-24页 |
| 2.1.3 细胞株 | 第24页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第24-25页 |
| 2.2 细胞培养基本方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 细胞的复苏 | 第25页 |
| 2.2.2 单层细胞的传代 | 第25-26页 |
| 2.2.3 细胞的冻存 | 第26页 |
| 2.2.4 血细胞计数板计数细胞 | 第26-28页 |
| 第三章 DMC对氧化损伤的MIN6细胞胰岛素分泌功能的影响 | 第28-36页 |
| 3.1 实验材料 | 第29页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第29页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第29页 |
| 3.1.3 KRBB缓冲液配制 | 第29页 |
| 3.1.4 胰岛素测定稀释液配制 | 第29页 |
| 3.1.5 主要仪器设备 | 第29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-31页 |
| 3.2.1 H_2O_2对MIN6细胞胰岛素分泌的影响 | 第29-30页 |
| 3.2.2 MTT法检测H_2O_2对MIN6细胞存活率的影响 | 第30页 |
| 3.2.3 DMC对MIN6细胞毒性的作用 | 第30页 |
| 3.2.4 DMC对氧化损伤的MIN6细胞胰岛素分泌的影响 | 第30-31页 |
| 3.2.5 MTT法检测DMC对胰岛素分泌受损的MIN6细胞存活率的影响 | 第31页 |
| 3.2.6 统计学方法 | 第31页 |
| 3.3 实验结果 | 第31-34页 |
| 3.3.1 H_2O_2诱导MIN6细胞胰岛素分泌损伤模型的建立 | 第31-32页 |
| 3.3.2 DMC对MIN6细胞毒性的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.3 DMC对氧化损伤的MIN6细胞胰岛素分泌的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.4 MTT法检测DMC对胰岛素分泌受损的MIN6细胞存活率的影响 | 第34页 |
| 3.4 讨论 | 第34-35页 |
| 3.5 小结 | 第35-36页 |
| 第四章 DMC对H_2O_2引起的MIN6细胞凋亡抑制活性及作用机制 | 第36-51页 |
| 4.1 实验材料及试剂配制 | 第36-37页 |
| 4.1.1 细胞株 | 第36页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第36-37页 |
| 4.1.3 主要仪器设备 | 第37页 |
| 4.2 实验方法 | 第37-41页 |
| 4.2.1 H_2O_2诱导MIN6氧化损伤模型的建立 | 第37页 |
| 4.2.2 DMC对氧化损伤的MIN6细胞影响 | 第37-38页 |
| 4.2.3 DMC对H_2O_2诱导的MIN6细胞凋亡的影响 | 第38-39页 |
| 4.2.3.1 荧光Hoechst33342染色法检测MIN6细胞凋亡 | 第38页 |
| 4.2.3.2 Annexin V-FITC/PI双染检测MIN6细胞凋亡率 | 第38-39页 |
| 4.2.4 DMC对H_2O_2诱导的MIN6细胞内活性氧簇(ROS)的影响 | 第39页 |
| 4.2.5 DMC对H_2O_2诱导的MIN6细胞线粒体膜电位的影响 | 第39-40页 |
| 4.2.6 DMC对H_2O_2诱导的MIN6细胞Capase-3和Caspase-9活性检测 | 第40页 |
| 4.2.7 考马斯亮蓝法测总蛋白含量 | 第40-41页 |
| 4.2.8 统计学方法 | 第41页 |
| 4.3 实验结果 | 第41-49页 |
| 4.3.1 H_2O_2诱导MIN6氧化损伤模型的建立 | 第41-42页 |
| 4.3.2 DMC对H_2O_2诱导的MIN6细胞氧化损伤的影响 | 第42页 |
| 4.3.3 荧光Hoechst33342染色法检测MIN6细胞凋亡 | 第42-43页 |
| 4.3.4 Annexin V-FITC/PI双染检测DMC对H202诱导MIN6细胞凋亡率的影响 | 第43-46页 |
| 4.3.5 DMC对H_2O_2诱导的MIN6细胞内活性氧簇(ROS)的影响 | 第46-47页 |
| 4.3.6 DMC对H_2O_2诱导的MIN6细胞线粒体膜电位的影响 | 第47-48页 |
| 4.3.7 DMC对H_2O_2诱导的MIN6细胞Capase-3和Caspase-9活性影响 | 第48-49页 |
| 4.4 讨论 | 第49页 |
| 4.5 小结 | 第49-51页 |
| 第五章 结论 | 第51-53页 |
| 5.1 全文结论 | 第51-52页 |
| 5.2 主要创新点 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 硕士期间学术论文情况 | 第61页 |
