| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩略词表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-22页 |
| 1 研究背景 | 第14-15页 |
| 2 国内外研究进展 | 第15-21页 |
| 2.1 月季组培快繁研究进展 | 第15-16页 |
| 2.2 月季植株再生的研究进展 | 第16-19页 |
| 2.2.1 月季器官发生途径 | 第16-18页 |
| 2.2.1.1 器官直接发生途径 | 第16-17页 |
| 2.2.1.2 器官间接发生途径 | 第17-18页 |
| 2.2.2 月季体细胞胚发生途径 | 第18-19页 |
| 2.3 植物细胞脱分化过程中的细胞学研究进展 | 第19-20页 |
| 2.4 蔷薇属植物遗传转化的研究进展 | 第20-21页 |
| 3 本研究的目的及意义 | 第21-22页 |
| 第二章 ‘光叶蔷薇’组培快繁体系的建立 | 第22-28页 |
| 1 材料和方法 | 第22-24页 |
| 1.1 试验材料 | 第22页 |
| 1.2 外植体灭菌与启动培养 | 第22-23页 |
| 1.3 继代增殖培养 | 第23页 |
| 1.4 生根、炼苗移栽 | 第23页 |
| 1.5 培养条件及数据统计 | 第23-24页 |
| 2 结果与分析 | 第24-25页 |
| 2.1 6-BA和NAA不同浓度组合对‘光叶蔷薇’增殖的影响 | 第24页 |
| 2.2 不同浓度NAA或IBA对‘光叶蔷薇’生根的影响 | 第24-25页 |
| 3 小结与讨论 | 第25-28页 |
| 第三章 ‘光叶蔷薇’再生途径的研究 | 第28-46页 |
| 1 材料与方法 | 第28-35页 |
| 1.1 试验材料 | 第28页 |
| 1.2 技术路线 | 第28-30页 |
| 1.3 试验方法 | 第30-35页 |
| 1.3.1 ‘光叶蔷薇’叶片直接再生途径 | 第30-31页 |
| 1.3.1.1 暗培养天数对不定芽诱导的影响 | 第30页 |
| 1.3.1.2 植物生长调节剂对不定芽诱导的影响 | 第30-31页 |
| 1.3.1.3 叶片幼嫩程度对不定芽诱导的影响 | 第31页 |
| 1.3.2 ‘光叶蔷薇’器官间接再生途径 | 第31-33页 |
| 1.3.2.1 愈伤组织的诱导 | 第31-32页 |
| 1.3.2.2 愈伤组织的继代培养 | 第32页 |
| 1.3.2.3 愈伤组织诱导分化不定芽 | 第32页 |
| 1.3.2.4 暗培养时间对不定芽诱导的影响 | 第32-33页 |
| 1.3.3 ‘光叶蔷薇’体细胞胚发生途径 | 第33-35页 |
| 1.3.3.1 直接途径诱导体细胞胚 | 第33页 |
| 1.3.3.2 间接途径诱导体细胞胚 | 第33-35页 |
| 2 结果与分析 | 第35-45页 |
| 2.1 ‘光叶蔷薇’叶片直接再生途径 | 第35-39页 |
| 2.1.1 暗培养天数对不定芽诱导的影响 | 第35页 |
| 2.1.2 植物生长调节剂对不定芽诱导的影响 | 第35页 |
| 2.1.3 叶片幼嫩程度对不定芽诱导的影响 | 第35-39页 |
| 2.2 ‘光叶蔷薇’的器官间接再生途径 | 第39-43页 |
| 2.2.1 愈伤组织的诱导 | 第39页 |
| 2.2.2 愈伤组织诱导分化不定芽 | 第39-40页 |
| 2.2.3 暗培养时间对不定芽诱导的影响 | 第40-43页 |
| 2.3 ‘光叶蔷薇’体细胞胚发生途径 | 第43-45页 |
| 2.3.1 直接途径诱导体细胞胚 | 第43页 |
| 2.3.2 间接途径诱导体细胞胚 | 第43-45页 |
| 2.3.2.1 NAA和不同细胞分裂素浓度组合对愈伤组织发生的影响 | 第43页 |
| 2.3.2.2 TDZ、NAA和GA_3不同浓度组合诱导结果 | 第43-44页 |
| 2.3.2.3 ZT和NAA不同浓度组合诱导结果 | 第44-45页 |
| 3 小结与讨论 | 第45-46页 |
| 第四章 ‘光叶蔷薇’愈伤组织形态发生的细胞学初步研究 | 第46-54页 |
| 1 主要内容 | 第46页 |
| 2 试验材料及方法 | 第46-48页 |
| 2.1 石蜡切片方法 | 第46-47页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第46-47页 |
| 2.1.2 切片制作 | 第47页 |
| 2.2 透射电镜制片 | 第47-48页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第47页 |
| 2.2.2 样品制作 | 第47-48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-50页 |
| 3.1 ‘光叶蔷薇’愈伤组织的发生 | 第48页 |
| 3.1.1 ‘光叶蔷薇’愈伤组织发生的形态特征观察 | 第48页 |
| 3.1.2 ‘光叶蔷薇’愈伤组织发生显微观察 | 第48页 |
| 3.2 ‘光叶蔷薇’愈伤组织增殖过程 | 第48-49页 |
| 3.2.1 ‘光叶蔷薇’愈伤组织增殖过程形态特征观察 | 第49页 |
| 3.2.2 ‘光叶蔷薇’愈伤组织增殖过程显微观察 | 第49页 |
| 3.2.3 ‘光叶蔷薇’可增殖愈伤组织超微结构观察 | 第49页 |
| 3.3 ‘光叶蔷薇’愈伤组织分化过程 | 第49-50页 |
| 3.3.1 ‘光叶蔷薇’愈伤组织分化过程形态特征观察 | 第50页 |
| 3.3.2 ‘光叶蔷薇’愈伤组织分化过程显微观察 | 第50页 |
| 4 小结及讨论 | 第50-54页 |
| 第五章 ‘光叶蔷薇’根癌农杆菌遗传转化体系建立的初步研究 | 第54-67页 |
| 1 材料与方法 | 第54-58页 |
| 1.1 试验材料 | 第54页 |
| 1.2 培养基与农杆菌 | 第54-56页 |
| 1.2.1 植物培养基 | 第54-55页 |
| 1.2.2 农杆菌培养基 | 第55页 |
| 1.2.3 农杆菌菌株与质粒 | 第55-56页 |
| 1.3 试验方法 | 第56-58页 |
| 1.3.1 小叶外植体对潮霉素的敏感性分析 | 第56页 |
| 1.3.2 愈伤组织对潮霉素的敏感性分析 | 第56页 |
| 1.3.3 工程菌液的制备 | 第56-57页 |
| 1.3.4 侵染、共培养 | 第57页 |
| 1.3.5 脱菌、选择培养 | 第57页 |
| 1.3.6 正交试验设计‘光叶蔷薇’遗传转化因素 | 第57页 |
| 1.3.7 GUS基因瞬时表达的检测 | 第57-58页 |
| 2 结果与分析 | 第58-65页 |
| 2.1 小叶对潮霉素的敏感性分析 | 第58-60页 |
| 2.2 愈伤组织对潮霉素的敏感性分析 | 第60页 |
| 2.3 外植体对遗传转化的影响 | 第60页 |
| 2.4 遗传转化条件优化 | 第60-65页 |
| 2.4.1 极差分析法 | 第60-61页 |
| 2.4.2 SAS方差分析 | 第61-63页 |
| 2.4.3 菌液浓度(OD_(600))对遗传转化结果的影响 | 第63-64页 |
| 2.4.4 侵染时间对遗传转化结果的影响 | 第64页 |
| 2.4.5 乙酰丁香酮浓度对遗传转化结果的影响 | 第64页 |
| 2.4.6 共培养时间对遗传转化结果的影响 | 第64-65页 |
| 3 小结与讨论 | 第65-67页 |
| 第六章 结论 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
