| 中文摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 符号说明 | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-18页 |
| 1.1 Rubisco活化酶的研究进展 | 第9-12页 |
| 1.1.1 RCA的结构 | 第9-10页 |
| 1.1.2 RCA的功能 | 第10页 |
| 1.1.3 RCA的表达特性 | 第10-11页 |
| 1.1.4 RCA的活力调控 | 第11页 |
| 1.1.5 总结与展望 | 第11-12页 |
| 1.2 光合作用 | 第12-14页 |
| 1.2.1 光合作用的意义 | 第12页 |
| 1.2.2 光合作用的不同途径 | 第12-13页 |
| 1.2.3 光合作用与作物产量的关系 | 第13-14页 |
| 1.2.4 光合作用与RCA的关系 | 第14页 |
| 1.2.5 总结与展望 | 第14页 |
| 1.3 遗传基因组学的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.3.1 遗传基因组学的概念 | 第14-15页 |
| 1.3.2 eQTL的研究方法 | 第15页 |
| 1.3.3 eQTL的应用 | 第15-16页 |
| 1.3.4 总结与展望 | 第16-17页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第17-18页 |
| 第二章 玉米Rubisco活化酶基因的eQTL分析 | 第18-28页 |
| 2.1 前言 | 第18页 |
| 2.2 材料与方法 | 第18-20页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第18-19页 |
| 2.2.2 RNA提取和cDNA合成 | 第19页 |
| 2.2.3 基因表达量测定 | 第19页 |
| 2.2.4 统计分析和全基因组关联分析 | 第19-20页 |
| 2.2.5 候选基因关联分析 | 第20页 |
| 2.3 结果分析 | 第20-26页 |
| 2.3.1 RNA质量和引物特异性检测 | 第20-21页 |
| 2.3.2 ZmRCAβ基因表达量的描述性统计分析 | 第21-22页 |
| 2.3.3 ZmRCAβ基因表达量的eQTL定位分析 | 第22-24页 |
| 2.3.4 ZmRCAβ启动子区变异位点的候选关联分析 | 第24-26页 |
| 2.4 讨论 | 第26-28页 |
| 第三章 水稻Rubisco活化酶基因的eQTL分析 | 第28-39页 |
| 3.1 前言 | 第28页 |
| 3.2 材料与方法 | 第28-29页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第28页 |
| 3.2.2 RNA提取和cDNA合成 | 第28-29页 |
| 3.2.3 基因表达量测定 | 第29页 |
| 3.2.4 统计分析和全基因组关联分析 | 第29页 |
| 3.2.5 DNA提取和PCR扩增 | 第29页 |
| 3.2.6 启动子序列分析 | 第29页 |
| 3.2.7 候选基因关联分析 | 第29页 |
| 3.3 结果分析 | 第29-38页 |
| 3.3.1 RNA质量和引物特异性检测 | 第29-31页 |
| 3.3.2 OsRCA基因表达量的描述性统计分析 | 第31-32页 |
| 3.3.3 OsRCA基因表达量的eQL定位分析 | 第32-33页 |
| 3.3.4 OsRCA启动子序列变异分析 | 第33-36页 |
| 3.3.5 OsRCA启动子区变异位点的候选关联分析 | 第36-38页 |
| 3.4 讨论 | 第38-39页 |
| 第四章 玉米和水稻间RCA基因启动子的活性比较 | 第39-49页 |
| 4.1 前言 | 第39页 |
| 4.2 材料与方法 | 第39-43页 |
| 4.2.1 试验材料与菌株质粒 | 第39页 |
| 4.2.2 表达载体的构建 | 第39-41页 |
| 4.2.3 水稻愈伤组织的转化 | 第41-42页 |
| 4.2.4 GUS组织化学染色 | 第42页 |
| 4.2.5 植物原生质体的提取和转化 | 第42-43页 |
| 4.2.6 双荧光素酶报告基因检测 | 第43页 |
| 4.3 结果分析 | 第43-47页 |
| 4.3.1 表达载体的鉴定 | 第43-45页 |
| 4.3.2 GUS表达活性分析 | 第45-46页 |
| 4.3.3 双荧光素酶表达活性分析 | 第46-47页 |
| 4.4 讨论 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 附录 | 第55-70页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第70页 |
| 资助项目 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
