摘要 | 第5-8页 |
Abstracts | 第8-10页 |
中英文缩略词表 | 第12-20页 |
第一章 绪论 | 第20-51页 |
1.1 引言 | 第20-22页 |
1.2 骨组织再生与骨修复生物材料 | 第22-24页 |
1.2.1 骨组织再生 | 第22-23页 |
1.2.2 骨修复生物材料 | 第23-24页 |
1.3 骨组织修复用生物活性玻璃的研究进展 | 第24-28页 |
1.3.1 生物活性玻璃的基因激活作用 | 第25-27页 |
1.3.2 生物活性玻璃的发展阶段 | 第27-28页 |
1.4 骨再生相关的信号通路 | 第28-35页 |
1.4.1 成骨分化相关信号通路 | 第29-31页 |
1.4.2 破骨分化相关信号通路 | 第31-35页 |
1.5 生物材料对免疫系统的影响 | 第35-40页 |
1.5.1 生物材料植入骨缺损处的免疫反应 | 第35-36页 |
1.5.2 材料的表面性质对免疫系统的影响 | 第36-37页 |
1.5.3 材料的尺寸对免疫系统的影响 | 第37-38页 |
1.5.4 生物活性离子对免疫系统的影响 | 第38-40页 |
1.6 巨噬细胞极化与骨修复 | 第40-43页 |
1.6.1 巨噬细胞极化 | 第40-41页 |
1.6.2 巨噬细胞极化与骨修复 | 第41-43页 |
1.7 生物材料对巨噬细胞极化的影响研究进展 | 第43-47页 |
1.7.1 材料尺寸、形状、结构对巨噬细胞的影响 | 第44-45页 |
1.7.2 材料的亲疏水性和表面化学对巨噬细胞的影响 | 第45-46页 |
1.7.3 材料的力学性质对巨噬细胞的影响 | 第46-47页 |
1.8 课题设计与创新 | 第47-51页 |
1.8.1 研究目的与意义 | 第47-48页 |
1.8.2 研究内容 | 第48-49页 |
1.8.3 研究技术路线 | 第49页 |
1.8.4 研究创新之处 | 第49-51页 |
第二章 掺锶亚微米生物活性玻璃的促成骨分化作用及其分子机制研究 | 第51-83页 |
2.1 引言 | 第51-53页 |
2.2 实验与方法 | 第53-64页 |
2.2.1 实验试剂与耗材 | 第53-55页 |
2.2.2 实验仪器 | 第55-56页 |
2.2.3 实验方法 | 第56-64页 |
2.2.3.1 亚微米(SBG)与掺锶亚微米生物活性玻璃(Sr-SBG)的制备 | 第56-57页 |
2.2.3.2 SBG和Sr-SBG浸提液的制备 | 第57页 |
2.2.3.3 测试与表征 | 第57-58页 |
2.2.3.4 小鼠骨髓间充质干细胞(mMSCs)的培养 | 第58页 |
2.2.3.5 细胞形态学观察与细胞增殖检测 | 第58-59页 |
2.2.3.6 SBG和Sr-SBG对成骨分化的作用 | 第59-62页 |
2.2.3.7 Wnt信号通路与NFATc信号通路的活化检测 | 第62-63页 |
2.2.3.8 抑制NFATc信号通路对Sr-SBG促成骨分化的影响 | 第63-64页 |
2.2.3.9 数据分析与处理 | 第64页 |
2.3 结果与讨论 | 第64-81页 |
2.3.1 SBG与Sr-SBG表征 | 第64-67页 |
2.3.2 细胞形态与细胞增殖 | 第67-69页 |
2.3.3 Sr-SBG和SBG对mMSCs成骨分化的影响 | 第69-72页 |
2.3.4 Wnt信号通路与NFATc信号通路的活化检测 | 第72-74页 |
2.3.5 抑制NFATc信号通路后,SBG、Sr-SBG和SrCl2对细胞增殖的影响 | 第74-75页 |
2.3.6 抑制NFATc信号通路后,SBG、Sr-SBG和SrCl2对成骨分化的影响 | 第75-79页 |
2.3.7 抑制NFATc信号通路对Wnt与NFATc信号通路的活化的检测 | 第79-80页 |
2.3.8 Sr-SBG对成骨分化的影响及其机制讨论 | 第80-81页 |
2.4 本章小结 | 第81-83页 |
第三章 掺锶亚微米生物活性玻璃对破骨分化的影响及其分子机制研究 | 第83-97页 |
3.1 引言 | 第83-84页 |
3.2 实验与方法 | 第84-88页 |
3.2.1 实验试剂与耗材 | 第84-85页 |
3.2.2 实验仪器 | 第85页 |
3.2.3 实验方法 | 第85-88页 |
3.2.3.1 SBG和Sr-SBG以及SBG和Sr-SBG浸提液的制备 | 第86页 |
3.2.3.2 RAW264.7 细胞的培养 | 第86页 |
3.2.3.3 SBG和Sr-SBG对破骨分化的作用 | 第86-87页 |
3.2.3.4 Sr-SBG抑制RANKL诱导的破骨分化的分子机制研究 | 第87-88页 |
3.2.3.5 数据分析处理 | 第88页 |
3.3 结果与讨论 | 第88-96页 |
3.3.1 Sr-SBG对RANKL诱导的RAW264.7 细胞破骨分化的影响 | 第88-93页 |
3.3.1.1 TRAP活性 | 第88-90页 |
3.3.1.2 细胞骨架F-actin染色 | 第90页 |
3.3.1.3 NFATc1免疫荧光染色 | 第90-93页 |
3.3.1.4 破骨相关基因表达 | 第93页 |
3.3.2 Sr-SBG抑制RANKL诱导的RAW264.7 细胞破骨分化的分子机制 | 第93-95页 |
3.3.3 Sr-SBG抑制破骨分化的分子机制讨论 | 第95-96页 |
3.4 本章小结 | 第96-97页 |
第四章 掺锶亚微米生物活性玻璃通过巨噬细胞极化调控成骨和破骨生成作用的研究 | 第97-120页 |
4.1 引言 | 第97-98页 |
4.2 实验与方法 | 第98-104页 |
4.2.1 实验试剂与耗材 | 第98页 |
4.2.2 实验仪器 | 第98-99页 |
4.2.3 实验方法 | 第99-104页 |
4.2.3.1 SBG与Sr-SBG及其浸提液的制备 | 第99页 |
4.2.3.2 细胞培养 | 第99页 |
4.2.3.3 Sr-SBG和SBG对巨噬细胞极化的影响 | 第99-101页 |
4.2.3.4 细胞共培养模型 | 第101-102页 |
4.2.3.5 Sr-SBG和SBG作用后的巨噬细胞条件培养液对成骨分化的调控 | 第102-103页 |
4.2.3.6 Sr-SBG和SBG作用后的巨噬细胞条件培养液对破骨分化的调控 | 第103-104页 |
4.2.3.7 mMSCs在巨噬细胞条件培养液作用下对破骨分化的调节 | 第104页 |
4.2.3.8 数据分析与处理 | 第104页 |
4.3 结果与讨论 | 第104-118页 |
4.3.1 SBG与Sr-SBG浸提液对巨噬细胞极化的影响 | 第104-107页 |
4.3.2 SBG与Sr-SBG浸提液对巨噬细胞促成骨相关基因表达的影响 | 第107页 |
4.3.3 SBG与Sr-SBG调控的巨噬细胞条件培养液离子浓度 | 第107-108页 |
4.3.4 Sr-SBG和SBG调控巨噬细胞条件培养液对mMSCs成骨分化的影响 | 第108-112页 |
4.3.5 Sr-SBG和SBG调控巨噬细胞条件培养液对RAW264.7 细胞破骨分化的影响 | 第112-114页 |
4.3.6 mMSCs在巨噬细胞条件培养液作用下对破骨分化的调节 | 第114-116页 |
4.3.7 Sr-SBG巨噬细胞条件培养液对成骨和破骨分化影响的讨论 | 第116-118页 |
4.4 本章小结 | 第118-120页 |
第五章 掺锶亚微米生物活性玻璃促进骨修复的体内研究 | 第120-133页 |
5.1 引言 | 第120页 |
5.2 动物实验 | 第120-124页 |
5.2.1 实验动物 | 第120页 |
5.2.2 实验试剂与仪器 | 第120-122页 |
5.2.3 实验方法 | 第122-124页 |
5.2.3.1 SBG与Sr-SBG的皮下埋植实验 | 第122页 |
5.2.3.2 SBG与Sr-SBG的原位骨缺损修复实验 | 第122-123页 |
5.2.3.3 SBG与Sr-SBG的体内炎症调节作用及成骨作用 | 第123-124页 |
5.3 结果与分析 | 第124-131页 |
5.3.1 ELISA检测皮下埋植实验炎症因子分泌 | 第124-125页 |
5.3.2 免疫组化检测原位骨缺损实验中巨噬细胞表面标记 | 第125页 |
5.3.3 原位骨缺损实验中炎症浸润情况 | 第125-127页 |
5.3.4 原位骨缺损实验中材料对体内骨形成的影响 | 第127页 |
5.3.5 原位骨缺损实验中材料对体内破骨细胞形成的影响 | 第127-129页 |
5.3.6 原位骨缺损实验中材料促进体内成骨细胞形成的分子机制 | 第129页 |
5.3.7 讨论 | 第129-131页 |
5.4 本章小结 | 第131-133页 |
结论 | 第133-136页 |
参考文献 | 第136-164页 |
攻读博士期间取得的研究成果 | 第164-167页 |
致谢 | 第167-169页 |
附件 | 第169页 |