摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-13页 |
缩略语表 | 第13-14页 |
1 前言 | 第14-16页 |
2 文献综述 | 第16-41页 |
·骨骼肌废用性萎缩的研究现状 | 第16-31页 |
·废用性肌萎缩模型的建构 | 第16-18页 |
·废用性肌萎缩时肌肉结构形态的变化 | 第18-20页 |
·废用性肌萎缩时肌肉功能的改变 | 第20-21页 |
·废用性肌萎缩时肌肉生理生化改变 | 第21-22页 |
·废用性肌萎缩的产生学说 | 第22页 |
·肌梭在骨骼肌废用性萎缩发生中的作用 | 第22-23页 |
·卫星细胞在骨骼肌废用性萎缩中的可能作用 | 第23-25页 |
·骨骼肌萎缩康复过程的相关肌肉生长因子及可能作用 | 第25-31页 |
·废用性肌萎缩的防治途径 | 第31-33页 |
·运动与康复训练 | 第32页 |
·其他防治废用性肌萎缩的手段 | 第32-33页 |
·振动训练的研究现状 | 第33-39页 |
·振动训练的作用原理 | 第34-35页 |
·振动训练的即时性效应和长期效应 | 第35-37页 |
·振动训练的参数设置 | 第37-38页 |
·振动训练的实施方法 | 第38-39页 |
·振动训练对骨骼肌的作用 | 第39-41页 |
3 研究方法 | 第41-49页 |
·研究方案 | 第41-46页 |
·动物与分组 | 第41-42页 |
·动物模型建立方法 | 第42页 |
·训练方法 | 第42-43页 |
·实验设备与实验试剂 | 第43-46页 |
·标本的制备及指标测定 | 第46-47页 |
·标本的取材操作 | 第46页 |
·免疫组织化学染色 | 第46-47页 |
·肌肉组织中各类因子测定 | 第47页 |
·数据采集与统计分析 | 第47-48页 |
·研究技术路线 | 第48-49页 |
4 研究结果 | 第49-66页 |
·各组大鼠比目鱼肌形态结构的变化 | 第49-56页 |
·比目鱼肌湿重体重比 | 第49-50页 |
·各组大鼠比目鱼肌Ⅰ、Ⅱ型纤维构成比例 | 第50-53页 |
·各组大鼠比目鱼肌肌纤维类型的转换结果 | 第53-54页 |
·各组大鼠比目鱼肌平均横截面积(CSA) | 第54-56页 |
·各组大鼠比目鱼肌肌肉蛋白因子表达的变化 | 第56-66页 |
·各组大鼠比目鱼肌IGF—Ⅰ表达的变化 | 第56-57页 |
·各组大鼠比目鱼肌MyoD变化 | 第57-59页 |
·各组大鼠比目鱼肌Myogenin变化 | 第59-60页 |
·各组大鼠比目鱼肌Myostatin变化 | 第60-61页 |
·各组大鼠比目鱼肌TGF-p变化 | 第61-63页 |
·各组大鼠比目鱼肌bFGF变化 | 第63-64页 |
·各组大鼠比目鱼肌蛋白表达因子和形态学指标的相关性分析 | 第64-66页 |
5 讨论与分析 | 第66-83页 |
·振动刺激对悬吊后大鼠比目鱼肌纤维形态的变化 | 第67-72页 |
·悬吊后振动刺激对肌肉湿重的影响 | 第67-68页 |
·悬吊后振动刺激对肌纤维类型的影响 | 第68-70页 |
·悬吊后振动刺激对肌纤维平均横截面积(CSA)的影响 | 第70-72页 |
·振动刺激对肌肉蛋白生长因子的作用影响分析 | 第72-79页 |
·悬吊后振动刺激对各组大鼠IGF—Ⅰ的影响 | 第72-74页 |
·悬吊后振动刺激对各组大鼠MyoD和Myogenin的影响 | 第74-76页 |
·悬吊后振动刺激对各组大鼠Myostatin和TGF-β的影响 | 第76-78页 |
·蛋白表达因子和形态学指标的相关性分析 | 第78-79页 |
·振动刺激对废用性肌萎缩作用机制探讨 | 第79-83页 |
6 全文总结 | 第83-86页 |
·结论 | 第83页 |
·建议 | 第83页 |
·本研究创新点 | 第83-84页 |
·研究不足和展望 | 第84-86页 |
·实验条件的不足 | 第84页 |
·后期以卫星细胞为切入点进行研究 | 第84-85页 |
·加强对人体振动训练参数设置的实验研究 | 第85-86页 |
致谢 | 第86-87页 |
参考文献 | 第87-101页 |
附录 | 第101-106页 |
个人简历 在读期间发表的学术论文与研究成果 | 第106页 |