中文摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
英文缩略词表 | 第12-14页 |
前言 | 第14-16页 |
第一篇 文献综述 | 第16-62页 |
第1章 EPO 对神经系统的保护作用和可能机制 | 第16-28页 |
1 EPO 及 EPOR 的分布、诱导与转运 | 第16-19页 |
1.1 EPO 及 EPOR 的分布 | 第16-18页 |
1.2 EPO 及 EPOR 的诱导 | 第18页 |
1.3 EPO 的转运 | 第18-19页 |
2 EPO 对神经系统的保护作用 | 第19-22页 |
2.1 缺血缺氧性损伤 | 第19-20页 |
2.2 炎症性损伤 | 第20页 |
2.3 创伤和毒性物质引起的损伤 | 第20-21页 |
2.4 认知障碍 | 第21页 |
2.5 脑卒中治疗的临床研究 | 第21页 |
2.6 精神分裂症 | 第21-22页 |
3. EPO 神经保护作用的机制 | 第22-24页 |
3.1 抗凋亡作用 | 第22页 |
3.2 抑制炎性反应 | 第22-23页 |
3.3 抗谷氨酸毒性 | 第23页 |
3.4 抗氧化应激 | 第23页 |
3.5 调节神经递质 | 第23页 |
3.6 对毛细血管发挥调节作用 | 第23-24页 |
3.7 诱导神经营养因子的表达 | 第24页 |
3.8 增强细胞分化 | 第24页 |
3.9 其他作用 | 第24页 |
4. EPO 的信号转导途径 | 第24-28页 |
4.1 Janus 激酶-信号转导转录激活子(JAK-STAT)途径 | 第25页 |
4.2 磷脂酰肌醇-3-激酶(PI3K)途径 | 第25页 |
4.3 核转录因子(NF-κB)途径 | 第25-26页 |
4.4 钙离子通道途径 | 第26-28页 |
第2章 JNK 的生理、病理学特性及其临床应用 | 第28-38页 |
2.1 JNK 促进紫外线(UV)辐射下细胞 c-Jun(AP-1)的活化 | 第28-30页 |
2.2 MARK 级联反应的共性、个性与调节 | 第30-32页 |
2.3 JNK 的靶向因子及其识别机制 | 第32-33页 |
2.4 JNK 对生理和病理变化的作用 | 第33页 |
2.5 JNK 与神经元功能 | 第33-34页 |
2.6 JNK 与上皮层的迁移 | 第34-35页 |
2.7 JNK 作为药物研发的靶点 | 第35-38页 |
第3章 C-Jun 在神经系统损伤与修复中的作用 | 第38-42页 |
3.1 c-Jun 的结构与分子学活性 | 第38-39页 |
3.2 c-Jun 与神经细胞的死亡 | 第39-42页 |
参考文献 | 第42-62页 |
第二篇 EPO 对大鼠臂丛神经根性撕脱伤后脊髓神经元的保护作用及其分子机制的研究 | 第62-128页 |
第1章 改良全臂丛神经撕脱伤动物模型的建立与取材 | 第62-70页 |
1 前言 | 第62页 |
2 材料与方法 | 第62-65页 |
2.1 主要仪器 | 第62页 |
2.2 主要试剂 | 第62-63页 |
2.3 实验动物 | 第63页 |
2.4 手术操作过程 | 第63-64页 |
2.5 取材 | 第64-65页 |
3 讨论 | 第65-66页 |
4 结论 | 第66-68页 |
参考文献 | 第68-70页 |
第2章 EPO 对臂丛神经根性撕脱伤后神经元的保护作用 | 第70-100页 |
1 前言 | 第70-71页 |
2 主要仪器及试剂 | 第71-72页 |
3 方法 | 第72-75页 |
3.1 HE 染色方法 | 第72页 |
3.2 硫堇染色 | 第72-73页 |
3.3 TUNEL 检测细胞凋亡 | 第73-75页 |
3.5 血常规检查 | 第75页 |
4 统计学分析 | 第75页 |
5 实验结果 | 第75-88页 |
5.1 HE 染色结果 | 第75-78页 |
5.2 硫堇染色结果 | 第78-81页 |
5.3 TUNEL 检测结果 | 第81-83页 |
5.4 不同时间点神经元 cleaved-PARP(c-PARP)阳性表达情况 | 第83-85页 |
5.5 血常规结果 | 第85-88页 |
6 讨论 | 第88-94页 |
6.1 臂丛神经根性撕脱伤可显著降低脊髓神经元的存活率 | 第88-91页 |
6.2 臂丛神经根性撕脱后神经元的死亡类型及其时间相关性趋势 | 第91页 |
6.3 臂丛神经根性撕脱伤的损伤机制及治疗策略 | 第91-92页 |
6.4 促红细胞生成素对臂丛神经根性撕脱伤后神经元的保护作用 | 第92-94页 |
6.5 促红细胞生成素的其他影响 | 第94页 |
7 结论 | 第94-96页 |
参考文献 | 第96-100页 |
第3章 EPO 对臂丛根性撕脱伤后神经元的保护作用及与p-JNK , c-Jun 的关系 | 第100-128页 |
1 前言 | 第100-101页 |
2 主要仪器及试剂 | 第101-103页 |
2.1 主要仪器: | 第101-102页 |
2.2 主要试剂: | 第102页 |
2.3 溶液配制: | 第102-103页 |
3 方法 | 第103-110页 |
3.1 免疫组织化学染色 | 第103-104页 |
3.2 神经元梯度离心提取方法 | 第104-105页 |
3.3 Western blot 检测 | 第105-107页 |
3.4 细胞免疫荧光染色 | 第107-108页 |
3.5 实时定量 PCR 方法 | 第108-110页 |
4 统计学分析 | 第110页 |
5 实验结果 | 第110-121页 |
5.1 不同分离方法对脊髓细胞溶液的影响 | 第110-112页 |
5.2 臂丛神经根性撕脱伤及 EPO 治疗对 c-Jun 的影响 | 第112-117页 |
5.3 臂丛神经根性撕脱伤及 EPO 治疗对 p-JNK 的影响 | 第117-121页 |
6 讨论 | 第121-123页 |
6.1 臂丛神经根性撕脱伤后神经元凋亡与 JNK/c-Jun 通路的关系 | 第121-122页 |
6.2 促红细胞生成素的治疗作用与分子机制 | 第122-123页 |
7 结论 | 第123-124页 |
参考文献 | 第124-128页 |
作者简介 | 第128-130页 |
攻读博士学位期间发表的学术论文及参加的科研课题 | 第130-132页 |
致谢 | 第132页 |