| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 1 绪论 | 第16-36页 |
| 1.1 纳米材料概述 | 第16页 |
| 1.2 量子点概述 | 第16-20页 |
| 1.2.1 光致发光谱(Fluorescence,FL) | 第18-19页 |
| 1.2.2 量子效率(QY) | 第19-20页 |
| 1.3 量子点的特性 | 第20-22页 |
| 1.3.1 量子尺寸效应 | 第20-21页 |
| 1.3.2 表面效应 | 第21页 |
| 1.3.3 小尺寸效应 | 第21-22页 |
| 1.3.4 宏观量子隧道效应 | 第22页 |
| 1.3.5 介电限域效应 | 第22页 |
| 1.3.6 量子限域效应 | 第22页 |
| 1.4 量子点的发展 | 第22-27页 |
| 1.4.1 Ⅱ-Ⅵ族和Ⅲ-Ⅴ族量子点 | 第22-23页 |
| 1.4.2 Ⅱ-Ⅵ族和Ⅲ-Ⅴ族量子点毒性改良 | 第23-25页 |
| 1.4.3 贵金属纳米团簇 | 第25-26页 |
| 1.4.4 碳量子点 | 第26-27页 |
| 1.5 量子点生物毒性的评估 | 第27-29页 |
| 1.5.1 菌群形成测试 | 第28页 |
| 1.5.2 MTT法 | 第28-29页 |
| 1.6 量子点的应用 | 第29-33页 |
| 1.6.1 生物应用 | 第29-31页 |
| 1.6.2 太阳能电池和光分解水产氢 | 第31-32页 |
| 1.6.3 纳米组装器件 | 第32页 |
| 1.6.4 酶模拟物 | 第32-33页 |
| 1.7 选题的意义及研究内容 | 第33-36页 |
| 2 葡萄糖处理增强CdTe量子点的荧光性和稳定性 | 第36-52页 |
| 2.1 引言 | 第36-37页 |
| 2.2 实验部分 | 第37-41页 |
| 2.2.1 药品 | 第37-38页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第38页 |
| 2.2.3 CdTe QDs的制备 | 第38-39页 |
| 2.2.4 葡萄糖水浴改良CdTe QDs的荧光性 | 第39页 |
| 2.2.5 抗菌性测试 | 第39-40页 |
| 2.2.6 表征测试 | 第40-41页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第41-51页 |
| 2.3.1 CdTe QDs的制备 | 第41-43页 |
| 2.3.2 葡萄糖处理生成Glu-CdTe QDs | 第43页 |
| 2.3.3 Glu-CdTe QDs的结构和光谱 | 第43-46页 |
| 2.3.4 葡萄糖与CdTe QDs作用过程中影响因素的研究 | 第46-48页 |
| 2.3.5 葡萄糖修饰后CdTe QDs稳定性的变化 | 第48-49页 |
| 2.3.6 葡萄糖处理生成Glu-CdTe QDs对大肠杆菌的作用 | 第49-51页 |
| 2.4 结论 | 第51-52页 |
| 3 水热法合成高荧光和低毒性的CdTe@C纳米复合体 | 第52-70页 |
| 3.1 引言 | 第52-53页 |
| 3.2 实验部分 | 第53-57页 |
| 3.2.1 药品 | 第53-54页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第54页 |
| 3.2.3 制备CdTe@C纳米粒子 | 第54-55页 |
| 3.2.4 结构与形貌表征 | 第55-56页 |
| 3.2.5 CdTe@C NCs对pH,盐和氧化物的耐受性测试 | 第56页 |
| 3.2.6 CdTe@C NCs对NIH3T3纤维细胞的毒性测试 | 第56页 |
| 3.2.7 量子产率(QY)测试 | 第56-57页 |
| 3.3 结果和讨论 | 第57-68页 |
| 3.3.1 CdTe@C NCs的结构和形貌 | 第57-61页 |
| 3.3.2 CdTe@C NCs的形成机理 | 第61-62页 |
| 3.3.3 CdTe@C NCs的光学性质 | 第62-66页 |
| 3.3.4 CdTe@C NCs对pH,盐和过氧化氢的耐受性 | 第66-67页 |
| 3.3.5 CdTe@C NCs对鼠纤维细胞NIH3T3的毒性测试 | 第67-68页 |
| 3.4. 结论 | 第68-70页 |
| 4 碳量子点的合成与应用探究 | 第70-90页 |
| 4.1 引言 | 第70-71页 |
| 4.2 实验部分 | 第71-76页 |
| 4.2.1 试剂 | 第71-73页 |
| 4.2.2 试剂及仪器 | 第73页 |
| 4.2.3 合成和纯化CNPs | 第73页 |
| 4.2.4 结构与形貌表征 | 第73-74页 |
| 4.2.5 活性测试 | 第74-75页 |
| 4.2.6 CNPs的细胞毒性和细胞显像 | 第75-76页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第76-88页 |
| 4.3.1 CNPs的结构与形貌 | 第76-80页 |
| 4.3.2 CNPs的制备机理 | 第80-82页 |
| 4.3.3 过氧化物酶模拟物活性测试 | 第82-86页 |
| 4.3.4 特异性测试 | 第86-87页 |
| 4.3.5 生物应用 | 第87-88页 |
| 4.4 结论 | 第88-90页 |
| 5 Au/凹凸棒纳米复合体的合成及应用研究 | 第90-108页 |
| 5.1 引言 | 第90-91页 |
| 5.2 实验部分 | 第91-94页 |
| 5.2.1 试剂 | 第91-92页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第92-93页 |
| 5.2.3 荧光金纳米簇的制备 | 第93页 |
| 5.2.4 Au/ATP催化剂的制备 | 第93页 |
| 5.2.5 结构与形貌表征 | 第93-94页 |
| 5.2.6 Au/ATP NCs的生物毒性测试 | 第94页 |
| 5.2.7 Au/ATP NCs的催化活性测试 | 第94页 |
| 5.3 结果和讨论 | 第94-107页 |
| 5.3.1 荧光金纳米粒子的制备 | 第94-95页 |
| 5.3.2. Au/ATP NCs复合体的结构 | 第95-98页 |
| 5.3.3 Au/ATP NCs的生物毒性测试 | 第98-99页 |
| 5.3.4. Au/ATP NCs作为过氧化物酶模拟物检测H_2O_2、Fe~(3+)和Ag~+ | 第99-103页 |
| 5.3.5 Au/ATP NCs过氧化物酶活性的机理 | 第103-106页 |
| 5.3.6 Au/ATP NCs催化Suzuki-Miyaura偶联反应 | 第106-107页 |
| 5.4 结论 | 第107-108页 |
| 全文总结 | 第108-110页 |
| 致谢 | 第110-112页 |
| 参考文献 | 第112-131页 |
| 附录 | 第131页 |
