| 中文摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 英文缩略词表 | 第15-18页 |
| 前言 | 第18-25页 |
| 1. 丹参简介 | 第18页 |
| 2. 发汗的研究进展 | 第18-21页 |
| 3. 丹参“发汗”的研究现状 | 第21-22页 |
| 4. 指纹图谱在中药鉴别与质控中的应用 | 第22-24页 |
| 5. 课题设计 | 第24-25页 |
| 第一章 “发汗”对丹参药材主要成分含量的影响 | 第25-33页 |
| 1. 实验材料 | 第25-26页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第25页 |
| 1.2 仪器 | 第25-26页 |
| 1.3 样品 | 第26页 |
| 2. 实验方法 | 第26-30页 |
| 2.1 实验丹参分组及处理方法 | 第26页 |
| 2.2 标准品及供试品溶液的制备 | 第26-27页 |
| 2.3 色谱条件 | 第27页 |
| 2.4 线性关系考察 | 第27-28页 |
| 2.5 精密度试验 | 第28页 |
| 2.6 稳定性试验 | 第28页 |
| 2.7 重复性试验 | 第28页 |
| 2.8 加样回收率测定 | 第28-30页 |
| 2.9 统计分析 | 第30页 |
| 3. “发汗”过程中连续动态取样的丹参中含量测定 | 第30-31页 |
| 4. 讨论与小结 | 第31-32页 |
| 本章小结 | 第32-33页 |
| 第二章 发汗与非发汗丹参体内外指纹图谱比较研究 | 第33-57页 |
| 第一节 发汗与非发汗丹参药材指纹图谱研究 | 第33-51页 |
| 1. 实验材料 | 第33-34页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第33-34页 |
| 1.2 仪器 | 第34页 |
| 1.3 样品 | 第34页 |
| 2. 实验方法 | 第34-43页 |
| 2.1 实验溶液的制备 | 第34-35页 |
| 2.2 色谱条件 | 第35页 |
| 2.3 精密度试验 | 第35-38页 |
| 2.4 重复性试验 | 第38-40页 |
| 2.5 稳定性试验 | 第40-43页 |
| 2.6 统计分析 | 第43页 |
| 3. 发汗丹参药材指纹图谱建立 | 第43-48页 |
| 3.1 发汗丹参样品图谱的采集 | 第43页 |
| 3.2 共有峰的标定 | 第43-45页 |
| 3.3 共有峰的相对保留时间和相对峰面积 | 第45-47页 |
| 3.4 指纹图谱相似度评价 | 第47-48页 |
| 4. 基于HPLC指纹图谱对发汗与非发汗丹参的鉴别分析 | 第48-49页 |
| 5. 讨论与小结 | 第49-51页 |
| 第二节 发汗与非发汗丹参体内指纹图谱差异性研究 | 第51-56页 |
| 1. 实验材料 | 第51-52页 |
| 1.1 实验动物 | 第51页 |
| 1.2 材料与试剂 | 第51页 |
| 1.3 仪器 | 第51-52页 |
| 2. 实验方法 | 第52-53页 |
| 2.1 动物分组及给药 | 第52页 |
| 2.2 灌胃溶液的制备 | 第52页 |
| 2.3 生物样品的采集与处理 | 第52页 |
| 2.4 实验样品图谱的采集 | 第52页 |
| 2.5 统计分析 | 第52-53页 |
| 3. 发汗与非发汗丹参体内指纹图谱差异性分析 | 第53-55页 |
| 4. 讨论与小结 | 第55-56页 |
| 第三节 本章小结 | 第56-57页 |
| 第三章 发汗与非发汗丹参初步药效学比较研究 | 第57-77页 |
| 第一节 发汗丹参体外抗氧化活性研究 | 第57-62页 |
| 1. 实验材料 | 第57-58页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第57-58页 |
| 1.2 仪器 | 第58页 |
| 2. 实验方法 | 第58-60页 |
| 2.1 供试品溶液的制备 | 第58页 |
| 2.2 LPI脂质过氧化 | 第58页 |
| 2.3 DPPH自由基清除 | 第58-59页 |
| 2.4 SRS超氧自由基清除活性 | 第59页 |
| 2.5 统计分析 | 第59-60页 |
| 3. 发汗与非发汗丹参的体外抗氧化活性分析 | 第60-61页 |
| 4. 讨论与小结 | 第61-62页 |
| 第二节 发汗丹参对体外心肌细胞损伤的保护作用研究 | 第62-69页 |
| 1. 实验材料 | 第62-63页 |
| 1.1 细胞株 | 第62页 |
| 1.2 材料及试剂 | 第62页 |
| 1.3 仪器 | 第62-63页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第63页 |
| 2. 实验方法 | 第63-65页 |
| 2.1 H9C2心肌细胞细胞培养 | 第63页 |
| 2.2 H9C2心肌细胞H2O2损伤模型 | 第63-64页 |
| 2.3 实验药物浓度筛选 | 第64页 |
| 2.4 发汗与非发汗丹参对H2O2损伤H9C2心肌细胞的保护作用 | 第64-65页 |
| 2.5 统计分析 | 第65页 |
| 3. 实验结果 | 第65-68页 |
| 3.1 实验药物浓度筛选结果 | 第65-66页 |
| 3.2 倒置显微镜细胞形态观察 | 第66页 |
| 3.3 MTT法检测细胞活力 | 第66-67页 |
| 3.4 DAPI染色检测细胞凋亡 | 第67-68页 |
| 4. 讨论与小结 | 第68-69页 |
| 第三节 发汗与非发汗丹参对PC12细胞OGD/R的保护作用研究 | 第69-76页 |
| 1. 实验材料 | 第69-70页 |
| 1.1 细胞株 | 第69页 |
| 1.2 材料及试剂 | 第69页 |
| 1.3 仪器 | 第69-70页 |
| 1.4 主要溶液的配制 | 第70页 |
| 2. 实验方法 | 第70-72页 |
| 2.1 PC12细胞的培养 | 第70-71页 |
| 2.2 PC12细胞OGD/R损伤模型 | 第71页 |
| 2.3 实验药物浓度筛选 | 第71页 |
| 2.4 发汗与非发汗丹参对OGD/R损伤的PC12细胞的保护作用. | 第71-72页 |
| 2.5 统计分析 | 第72页 |
| 3. 实验结果 | 第72-75页 |
| 3.1 实验药物浓度筛选 | 第72-73页 |
| 3.2 倒置显微镜观察PC12细胞形态 | 第73-74页 |
| 3.3 MTT法检测细胞活力 | 第74页 |
| 3.4 Annexin V-FITC/PI双染法测定细胞凋亡 | 第74-75页 |
| 4. 讨论与小结 | 第75-76页 |
| 第四节 本章小结 | 第76-77页 |
| 全文总结 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-83页 |
| 综述 | 第83-92页 |
| 参考文献 | 第88-92页 |
| 个人简介 | 第92-93页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94页 |
