摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
1 绪论 | 第11-21页 |
1.1 国内外研究现状 | 第11-17页 |
1.1.1 高血压脑出血及其危险因素 | 第11-12页 |
1.1.2 高盐对心脑血管疾病及高血压脑出血的影响 | 第12-13页 |
1.1.3 PAK1在脑出血等相关疾病调控中的作用 | 第13-15页 |
1.1.4 高盐对内皮细胞等生物学行为的影响 | 第15-17页 |
1.2 问题的提出与研究意义 | 第17-18页 |
1.3 本文的研究目的和主要研究内容 | 第18页 |
1.3.1 研究目的 | 第18页 |
1.3.2 主要研究内容 | 第18页 |
1.4 本文的特色与创新之处 | 第18-20页 |
1.5 技术路线 | 第20-21页 |
2 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)原代培养及鉴定 | 第21-31页 |
2.1 引言 | 第21页 |
2.2 实验材料 | 第21-23页 |
2.2.1 内皮细胞 | 第21页 |
2.2.2 主要仪器设备及耗材 | 第21-22页 |
2.2.3 主要试剂及配制方法 | 第22-23页 |
2.3 实验方法 | 第23-26页 |
2.3.1 内皮细胞的体外分离与原代培养 | 第23-25页 |
2.3.2 内皮细胞鉴定 | 第25-26页 |
2.4 实验结果 | 第26-28页 |
2.4.1 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)的培养 | 第26-27页 |
2.4.2 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)的鉴定 | 第27-28页 |
2.5 讨论 | 第28-29页 |
2.6 小结 | 第29-31页 |
3 高盐对血管内皮细胞PAK1表达的影响 | 第31-51页 |
3.1 引言 | 第31页 |
3.2 实验材料 | 第31-35页 |
3.2.1 实验细胞 | 第31页 |
3.2.2 主要仪器设备及耗材 | 第31-32页 |
3.2.3 相关主要试剂以及配置方法 | 第32-35页 |
3.3 相关试验方法 | 第35-44页 |
3.3.1 细胞培养 | 第35页 |
3.3.2 高盐处理 | 第35-36页 |
3.3.3 RNA提取和反转录 | 第36-38页 |
3.3.4 PAK1基因表达的Real-time PCR检测 | 第38-39页 |
3.3.5 PAK1蛋白表达的Western blot和免疫荧光检测 | 第39-42页 |
3.3.6 内皮细胞MMP-2、MMP-9 表达的酶谱检测 | 第42-43页 |
3.3.7 内皮细胞通透性检测 | 第43-44页 |
3.4 实验结果 | 第44-47页 |
3.4.1 高盐处理对内皮细胞PAK1基因和蛋白水平表达的影响 | 第44-45页 |
3.4.2 高盐处理对内皮细胞MMP-2 和MMP-9 表达和活性的影响 | 第45-46页 |
3.4.4 高盐处理对内皮细胞通透性的影响 | 第46-47页 |
3.5 讨论 | 第47-48页 |
3.6 本章小结 | 第48-51页 |
4 高盐对SHR脑豆纹动脉内皮细胞PAK1表达及血管渗透性的影响 | 第51-67页 |
4.1 引言 | 第51页 |
4.2 实验材料 | 第51-53页 |
4.2.1 实验动物 | 第51页 |
4.2.2 实验材料与仪器设备 | 第51-52页 |
4.2.3 相关主要试剂以及配置方法 | 第52-53页 |
4.3 相关试验方法 | 第53-59页 |
4.3.1 自发性高血压鼠(SHR)饲养 | 第53-54页 |
4.3.2 自发性高血压鼠(SHR)血压、心率、血液生理生化指标的检测 | 第54-55页 |
4.3.3 SHR鼠心脏灌注和摘取脑组织 | 第55-56页 |
4.3.4 SHR脑豆纹动脉血管内皮细胞PAK1表达的免疫组织化学染色法检测 | 第56-57页 |
4.3.5 SHR脑豆纹动脉血管通透性及出血的检测 | 第57-59页 |
4.4 实验结果 | 第59-65页 |
4.4.1 高盐对SHR血压、心率、血液生理生化指标的影响 | 第59-61页 |
4.4.2 高盐对SHR脑豆纹动脉血管内皮细胞PAK1表达的影响 | 第61-63页 |
4.4.4 高盐对SHR脑豆纹动脉血管通透性及出血的影响 | 第63-65页 |
4.5 讨论 | 第65页 |
4.6 小结 | 第65-67页 |
5 结论与展望 | 第67-69页 |
5.1 本文研究的主要结论 | 第67页 |
5.2 后续工作及展望 | 第67-69页 |
致谢 | 第69-71页 |
参考文献 | 第71-79页 |
附录 | 第79页 |
A. 作者在攻读硕士学位期间参加的科研项目情况 | 第79页 |