| 摘要 | 第4-5页 |
| Summary | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-22页 |
| 1 高原低氧适应性进化 | 第9-15页 |
| 1.1 生理生化、形态结构和细胞代谢等的适应性进化特征 | 第9-10页 |
| 1.2 分子水平适应进化 | 第10-15页 |
| 2 脯氨酸羟化酶概述 | 第15-18页 |
| 2.1 PHDs家族概述 | 第15-16页 |
| 2.2 PHDs的类型和分布 | 第16页 |
| 2.3 染色体定位及基因结构 | 第16页 |
| 2.4 PHDs家族的工作机制 | 第16-17页 |
| 2.5 PHDs家族的生物学功能 | 第17-18页 |
| 3 PHD2基因及其研究进展 | 第18-20页 |
| 3.1 PHD2基因的结构特点及表达调控 | 第18页 |
| 3.2 PHD2基因多态性和表达研究 | 第18-20页 |
| 3.3 PHD2基因在高原低氧适应中的研究进展 | 第20页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第20-22页 |
| 第二章 试验材料与研究方法 | 第22-39页 |
| 1 试验材料 | 第22-26页 |
| 1.1 血样、组织样采集 | 第22页 |
| 1.2 主要试剂、仪器设备和主要溶剂配制 | 第22-26页 |
| 2 试验方法 | 第26-36页 |
| 2.1 DNA的提取和检测 | 第26-27页 |
| 2.2 总RNA的提取和检测 | 第27-29页 |
| 2.3 cDNA合成 | 第29-30页 |
| 2.4 引物设计与扩增 | 第30-32页 |
| 2.5 扩增产物琼脂糖检测 | 第32-33页 |
| 2.6 扩增产物SSCP检测 | 第33-34页 |
| 2.7 基因克隆与测序 | 第34-36页 |
| 3 数据分析方法 | 第36-39页 |
| 3.1 生物信息学分析方法 | 第36页 |
| 3.2 实时荧光定量数据分析方法 | 第36-37页 |
| 3.3 基因多态性分析方法 | 第37-39页 |
| 第三章 结果与分析 | 第39-56页 |
| 1 藏绵羊PHD2基因生物信息学分析 | 第39-49页 |
| 1.1 藏绵羊PHD2基因PCR扩增结果 | 第39页 |
| 1.2 藏绵羊扩增序列比对 | 第39-40页 |
| 1.3 藏绵羊PHD2蛋白理化性质分析 | 第40-41页 |
| 1.4 亚细胞定位 | 第41页 |
| 1.5 信号肽剪切位点预测 | 第41-42页 |
| 1.6 跨膜螺旋结构预测 | 第42-43页 |
| 1.7 磷酸化和糖基化位点预测 | 第43页 |
| 1.8 保守结构域分析 | 第43-44页 |
| 1.9 亲疏水性分析 | 第44-45页 |
| 1.10 功能预测与分析 | 第45-47页 |
| 1.11 二级结构和三级结构预测分析 | 第47-49页 |
| 2 绵羊PHD2基因各组织表达差异 | 第49-52页 |
| 2.1 总RNA提取琼脂糖电泳质量检测 | 第49页 |
| 2.2 目的基因PCR产物琼脂糖电泳检测 | 第49-50页 |
| 2.3 目的基因RT-qPCR动力学曲线分析 | 第50-51页 |
| 2.4 目的基因RT-qPCR溶解曲线分析 | 第51页 |
| 2.5 目的基因在绵羊不同组织中的表达分析 | 第51-52页 |
| 3 绵羊PHD2基因多态性遗传特征 | 第52-56页 |
| 3.1 PCR扩增检测 | 第52页 |
| 3.2 SSCP检测 | 第52-53页 |
| 3.3 等位基因序列比对 | 第53-54页 |
| 3.4 群体遗传特性分析 | 第54-56页 |
| 第四章 讨论 | 第56-59页 |
| 1 藏绵羊PHD2基因生物信息学特征 | 第56-57页 |
| 2 绵羊PHD2基因mRNA表达差异 | 第57页 |
| 3 绵羊PHD2基因变异特征 | 第57-59页 |
| 第五章 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 附件 | 第66-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 作者简介 | 第69-70页 |
| 导师简介 | 第70-71页 |