| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩略词 | 第11-19页 |
| 第一章 绪论 | 第19-33页 |
| 1.1 蝙蝠蛾拟青霉概述 | 第19-21页 |
| 1.1.1 蝙蝠蛾拟青霉简介 | 第19页 |
| 1.1.2 蝙蝠蛾拟青霉药理作用 | 第19-21页 |
| 1.2 真菌菌丝体液体深层发酵技术及优化方法 | 第21-22页 |
| 1.2.1 真菌液体深层发酵技术 | 第21页 |
| 1.2.2 化学计量学概述 | 第21-22页 |
| 1.3 多糖概述 | 第22-26页 |
| 1.3.1 多糖的制备 | 第23-24页 |
| 1.3.2 多糖的主要功效 | 第24-25页 |
| 1.3.3 真菌多糖研究现状 | 第25-26页 |
| 1.4 糖尿病及肾病并发症研究现状 | 第26-32页 |
| 1.4.1 糖尿病概述 | 第26-27页 |
| 1.4.2 糖尿病肾病并发症 | 第27页 |
| 1.4.3 糖尿病肾病的治疗 | 第27-30页 |
| 1.4.4 氧化应激与糖尿病肾病 | 第30-32页 |
| 1.5 立题背景及意义 | 第32-33页 |
| 第二章 蝙蝠蛾拟青霉菌株诱变选育及培养条件优化 | 第33-49页 |
| 2.1 引言 | 第33页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第33-34页 |
| 2.2.1 仪器设备 | 第33-34页 |
| 2.2.2 实验菌株 | 第34页 |
| 2.2.3 试剂及配制 | 第34页 |
| 2.2.4 培养基 | 第34页 |
| 2.3 实验方法 | 第34-40页 |
| 2.3.1 菌种活化及培养 | 第34-35页 |
| 2.3.2 菌株的诱变选育 | 第35页 |
| 2.3.3 菌体生长曲线的测定 | 第35-36页 |
| 2.3.4 菌株培养基优化 | 第36-40页 |
| 2.4 实验结果 | 第40-46页 |
| 2.4.1 菌株诱变选育 | 第40-41页 |
| 2.4.2 菌体生长曲线的绘制 | 第41-42页 |
| 2.4.3 菌株培养基优化结果 | 第42-46页 |
| 2.5 本章小结 | 第46-49页 |
| 第三章 蝙蝠蛾拟青霉菌丝体水提物在Ⅱ型糖尿病大鼠中抗糖尿病及肾病并发症活性研究 | 第49-73页 |
| 3.1 引言 | 第49页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第49-51页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第49-50页 |
| 3.2.2 实验试剂及配制 | 第50页 |
| 3.2.3 实验测定试剂盒 | 第50-51页 |
| 3.2.4 实验动物 | 第51页 |
| 3.3 实验方法 | 第51-53页 |
| 3.3.1 蝙蝠蛾拟青霉菌丝体水提物（PHC）的制备 | 第51页 |
| 3.3.2 Ⅱ型糖尿病大鼠模型的建立 | 第51页 |
| 3.3.3 大鼠分组 | 第51-52页 |
| 3.3.4 大鼠口服糖耐量测定 | 第52页 |
| 3.3.5 样品收集及大鼠血清生化指标检测 | 第52页 |
| 3.3.6 大鼠脏器指数检测及肾脏组织病理学检测 | 第52页 |
| 3.3.7 western blot研究 | 第52-53页 |
| 3.3.8 统计学处理 | 第53页 |
| 3.4 实验结果 | 第53-70页 |
| 3.4.1 PHC对大鼠体重及血糖的影响 | 第53-54页 |
| 3.4.2 PHC对大鼠口服糖耐量的影响 | 第54-55页 |
| 3.4.3 PHC对大鼠血浆胰岛素、糖化血红蛋白水平的影响 | 第55-57页 |
| 3.4.4 PHC对大鼠丙酮酸激酶及肝糖原含量的影响 | 第57-58页 |
| 3.4.5 PHC对大鼠血脂含量的影响 | 第58-59页 |
| 3.4.6 PHC对大鼠抗氧化活性的影响 | 第59-63页 |
| 3.4.7 PHC对大鼠糖尿病肾病并发症的抑制作用 | 第63-70页 |
| 3.5 本章小结 | 第70-73页 |
| 第四章 蝙蝠蛾拟青霉发酵菌丝体胞内多糖的提取、分离纯化及理化性质分析 | 第73-91页 |
| 4.1 仪器与材料 | 第73-74页 |
| 4.1.1 实验仪器 | 第73-74页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第74页 |
| 4.1.3 培养基 | 第74页 |
| 4.2 实验方法 | 第74-78页 |
| 4.2.1 蝙蝠蛾拟青霉菌丝体胞内多糖提取工艺优化 | 第74-76页 |
| 4.2.2 蝙蝠蛾拟青霉PH40胞内粗多糖的制备 | 第76页 |
| 4.2.3 蝙蝠蛾拟青霉PH40胞内多糖的分离纯化 | 第76页 |
| 4.2.4 纯化多糖分子量测定 | 第76-77页 |
| 4.2.5 纯化多糖单糖组成分析 | 第77页 |
| 4.2.6 纯化多糖紫外光谱检测 | 第77页 |
| 4.2.7 纯化多糖红外光谱检测 | 第77-78页 |
| 4.2.8 纯化多糖高碘酸氧化及Smith降解分析 | 第78页 |
| 4.3 实验结果 | 第78-88页 |
| 4.3.1 蝙蝠蛾拟青霉菌丝体胞内多糖提取工艺优化 | 第78-83页 |
| 4.3.2 蝙蝠蛾拟青霉PH40胞内粗多糖的制备 | 第83页 |
| 4.3.3 蝙蝠蛾拟青霉PH40胞内多糖的分离纯化 | 第83-84页 |
| 4.3.4 PHEA均一性及分子量测定 | 第84-85页 |
| 4.3.5 PHEA紫外光谱分析 | 第85页 |
| 4.3.6 PHEA单糖组成分析 | 第85-86页 |
| 4.3.7 PHEA近红外光谱分析 | 第86-87页 |
| 4.3.8 PHEA高碘酸氧化及Smith降解分析 | 第87-88页 |
| 4.4 本章小结 | 第88-91页 |
| 第五章 蝙蝠蛾拟青霉菌丝体纯化多糖在DB/DB小鼠中抗糖尿病及肾病并发症活性研究 | 第91-119页 |
| 5.1 引言 | 第91页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第91-93页 |
| 5.2.1 实验仪器设备 | 第91页 |
| 5.2.2 实验试剂 | 第91-92页 |
| 5.2.3 试剂盒 | 第92-93页 |
| 5.2.4 实验动物 | 第93页 |
| 5.3 实验方法 | 第93-95页 |
| 5.3.1 实验动物分组及给药 | 第93页 |
| 5.3.2 小鼠糖耐量检测 | 第93页 |
| 5.3.3 样品收集 | 第93-94页 |
| 5.3.4 PHEA降血糖活性研究 | 第94页 |
| 5.3.5 PHEA降血脂活性研究 | 第94页 |
| 5.3.6 PHEA抗氧化活性研究 | 第94页 |
| 5.3.7 PHEA抗糖尿病肾病活性研究 | 第94页 |
| 5.3.8 western blot检测 | 第94-95页 |
| 5.3.9 组织病理学检测 | 第95页 |
| 5.3.10 统计学处理 | 第95页 |
| 5.4 实验结果 | 第95-116页 |
| 5.4.1 PHEA对小鼠体重及血糖变化的影响 | 第95-97页 |
| 5.4.2 PHEA对小鼠摄食摄水及脏器指数的影响 | 第97-99页 |
| 5.4.3 PHEA对小鼠糖耐量的影响 | 第99-100页 |
| 5.4.4 PHEA对小鼠糖代谢的影响 | 第100-101页 |
| 5.4.5 PHEA对小鼠糖原合成的影响 | 第101-103页 |
| 5.4.6 PHEA对小鼠血脂水平的影响 | 第103-105页 |
| 5.4.7 PHEA对小鼠机体氧化应激的影响 | 第105-108页 |
| 5.4.8 PHEA对小鼠糖尿病肾病的抑制作用 | 第108-112页 |
| 5.4.9 western blot检测 | 第112-114页 |
| 5.4.10 PHEA对小鼠脏器病理学影响 | 第114-116页 |
| 5.5 本章小结 | 第116-119页 |
| 第六章 结论与展望 | 第119-123页 |
| 6.1 结论 | 第119-121页 |
| 6.2 研究展望 | 第121-123页 |
| 参考文献 | 第123-137页 |
| 附录 1 | 第137-141页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第141-145页 |
| 致谢 | 第145页 |
