摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第10-26页 |
1.1 水凝胶概述 | 第10-14页 |
1.1.1 高分子水凝胶分类 | 第11-12页 |
1.1.2 生物高分子水凝胶的结构及性能 | 第12-13页 |
1.1.3 互穿网络水凝胶 | 第13-14页 |
1.2 水凝胶交联方法及研究现状 | 第14-17页 |
1.2.1 物理交联法 | 第14-16页 |
1.2.2 化学交联法 | 第16页 |
1.2.3 酶交联法 | 第16-17页 |
1.3 壳聚糖在生物医用材料中的应用 | 第17页 |
1.4 明胶在生物医用材料中的应用 | 第17-18页 |
1.5 水凝胶纤维概述 | 第18-20页 |
1.5.1 湿法纺丝的原理及理论 | 第18-19页 |
1.5.2 湿纺制备水凝胶纤维的研究进展及应用 | 第19-20页 |
1.6 本课题的研究内容 | 第20-21页 |
参考文献 | 第21-26页 |
第二章 双酶交联明胶/壳聚糖-对羟基苯丙酸互穿网络水凝胶的制备与表征 | 第26-58页 |
2.1 引言 | 第26-27页 |
2.2 实验部分 | 第27-35页 |
2.2.1 主要试剂与仪器 | 第27-28页 |
2.2.2 壳聚糖-对羟基苯丙酸前体(chitosan-PA)的合成 | 第28-29页 |
2.2.3 红外光谱表征 | 第29页 |
2.2.4 ~1H NMR分析 | 第29页 |
2.2.5 Chitosan-PA前体中PA取代度的测定 | 第29页 |
2.2.6 Chitosan-PA凝胶化时间测定 | 第29-30页 |
2.2.7 流变学试验 | 第30-31页 |
2.2.8 互穿网络水凝胶膜的制备 | 第31-32页 |
2.2.9 力学性能测试 | 第32页 |
2.2.10 光学性能试验 | 第32页 |
2.2.11 溶胀性试验 | 第32-33页 |
2.2.12 体外酶降解试验 | 第33页 |
2.2.13 细胞培养实验 | 第33-34页 |
2.2.14 细胞毒性试验 | 第34页 |
2.2.15 细胞粘附实验 | 第34页 |
2.2.16 水凝胶包裹细胞 | 第34-35页 |
2.3 结果与讨论 | 第35-53页 |
2.3.1 Chitosan-PA前体的红外光谱分析 | 第35-36页 |
2.3.2 Chitosan-PA前体的~1H NMR分析 | 第36-37页 |
2.3.3 Chitosan-PA前体中PA取代度 | 第37页 |
2.3.4 Chitosan-PA凝胶化时间 | 第37-40页 |
2.3.5 流变学分析 | 第40-41页 |
2.3.6 互穿网络水凝胶的交联机理 | 第41-42页 |
2.3.7 力学性能 | 第42-48页 |
2.3.8 光学性能 | 第48-49页 |
2.3.9 溶胀性 | 第49页 |
2.3.10 体外降解 | 第49-50页 |
2.3.11 细胞毒性 | 第50-51页 |
2.3.12 细胞粘附 | 第51-52页 |
2.3.13 水凝胶包裹细胞 | 第52-53页 |
2.4 本章小结 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-58页 |
第三章 双酶交联明胶/壳聚糖-对羟基苯丙酸互穿网络水凝胶纤维的制备与表征 | 第58-73页 |
3.1 引言 | 第58页 |
3.2 实验部分 | 第58-62页 |
3.2.1 主要试剂与仪器 | 第58-59页 |
3.2.2 水凝胶纤维的制备 | 第59-60页 |
3.2.3 力学性能测试 | 第60页 |
3.2.4 溶胀性试验 | 第60-61页 |
3.2.5 体外酶降解试验 | 第61页 |
3.2.6 互穿网络水凝胶纤维的编织 | 第61页 |
3.2.7 细胞培养实验 | 第61页 |
3.2.8 细胞毒性试验 | 第61页 |
3.2.9 细胞粘附实验 | 第61-62页 |
3.3 结果与讨论 | 第62-70页 |
3.3.1 成纤维性 | 第62-63页 |
3.3.2 力学性能 | 第63-66页 |
3.3.3 溶胀性 | 第66-67页 |
3.3.4 体外酶降解 | 第67-68页 |
3.3.5 互穿网络水凝胶纤维的编织 | 第68页 |
3.3.6 细胞毒性 | 第68-69页 |
3.3.7 细胞粘附 | 第69-70页 |
3.4 本章小结 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-73页 |
第四章 全文总结与展望 | 第73-75页 |
4.1 全文总结 | 第73页 |
4.2 展望 | 第73-75页 |
致谢 | 第75-76页 |
附录 攻读硕士学位期间所发表的学术论文及专利 | 第76页 |