| 摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 常见英文缩写一览表（按照英文首字母排序） | 第17-19页 |
| 第一章 引言 | 第19-26页 |
| 1.1 肥大细胞及其活化 | 第19-21页 |
| 1.2 I型变态反应 | 第21-23页 |
| 1.3 蛋白 4.1R | 第23-25页 |
| 1.4 课题技术路线 | 第25-26页 |
| 第二章 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)C57BL/6J小鼠骨髓源性肥大细胞的定向诱导 | 第26-35页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第27-29页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第27页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.4 主要溶液及配置方法 | 第29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-31页 |
| 2.2.1 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)C57BL/6J小鼠骨髓细胞的获取 | 第29-30页 |
| 2.2.2 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)C57BL/6J小鼠骨髓源性肥大细胞的定向诱导 | 第30页 |
| 2.2.3 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)BMMC的甲苯胺蓝染色 | 第30页 |
| 2.2.4 流式细胞术检测 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)BMMC纯度 | 第30-31页 |
| 2.3 实验结果 | 第31-33页 |
| 2.3.1 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)BMMC光镜下生物学形态 | 第31-32页 |
| 2.3.2 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)BMMC的纯度鉴定 | 第32-33页 |
| 2.4 结果讨论 | 第33-35页 |
| 第三章 4.1R在BMMC中的表达鉴定 | 第35-45页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第36-38页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第36页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第36-37页 |
| 3.1.3 主要溶液及配置方法 | 第37-38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-42页 |
| 3.2.1 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)BMMC的RNA提取 | 第38页 |
| 3.2.2 反转录为cDNA | 第38-39页 |
| 3.2.3 4.1R的PCR扩增 | 第39-40页 |
| 3.2.4 PCR产物的纯化 | 第40页 |
| 3.2.5 4.1R与pMD~(TM)19-T质粒的链接 | 第40-41页 |
| 3.2.6 pMD~(TM)19-T-4.1R重组质粒的转化 | 第41页 |
| 3.2.7 pMD~(TM)19-T-4.1R重组质粒的提取以及鉴定 | 第41-42页 |
| 3.3 实验结果 | 第42-43页 |
| 3.3.1 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)BMMC中4.1R转录水平鉴定 | 第42页 |
| 3.3.2 BMMC中 4.1R基因外显子图谱 | 第42-43页 |
| 3.4 结果讨论 | 第43-45页 |
| 第四章 4.1R基因缺失对IgE介导的BMMC活化的影响 | 第45-58页 |
| 4.1 材料与试剂 | 第46-48页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第46页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第46-47页 |
| 4.1.3 主要溶液及配置方法 | 第47-48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-51页 |
| 4.2.1 4.1R基因缺失对IgE介导的BMMC脱颗粒的影响 | 第48-49页 |
| 4.2.2 4.1R基因缺失对IgE介导的BMMC炎症因子合成的影响 | 第49-51页 |
| 4.2.3 4.1R基因缺失对IgE介导的BMMC中FcεRI转录水平表达的影响 | 第51页 |
| 4.2.4 4.1R基因缺失对IgE介导的BMMC表面FcεRIα表达的影响 | 第51页 |
| 4.3 实验结果 | 第51-55页 |
| 4.3.1 4.1R基因缺失对IgE介导的BMMC脱颗粒的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.2 4.1R基因缺失对IgE介导的BMMC炎症因子合成的影响 | 第52-53页 |
| 4.3.3 4.1R基因缺失对IgE介导的BMMC中FcεRI转录水平表达的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.4 4.1R基因缺失对IgE介导的BMMC表面FcεRIα表达的影响 | 第54-55页 |
| 4.4 结果讨论 | 第55-58页 |
| 第五章 4.1R基因缺失对被动皮肤过敏反应的影响 | 第58-64页 |
| 5.1 材料与试剂 | 第59-60页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第59页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第59-60页 |
| 5.1.3 主要仪器 | 第60页 |
| 5.1.4 主要溶液及配置方法 | 第60页 |
| 5.2 实验方法 | 第60-61页 |
| 5.3 实验结果 | 第61-62页 |
| 5.3.1 4.1R~(+/+)和 4.1R~(-/-)C57BL/6J小鼠各组织中肥大细胞数量统计 | 第61页 |
| 5.3.2 4.1R基因缺失对被动皮肤过敏反应血管渗透性的影响 | 第61-62页 |
| 5.3.3 4.1R基因缺失对被动皮肤过敏反应耳厚的影响 | 第62页 |
| 5.4 结果讨论 | 第62-64页 |
| 第六章 4.1R基因缺失对迟发相皮肤过敏反应的影响 | 第64-71页 |
| 6.1 材料与试剂 | 第65-66页 |
| 6.1.1 实验动物 | 第65页 |
| 6.1.2 主要试剂 | 第65-66页 |
| 6.1.3 主要仪器 | 第66页 |
| 6.1.4 主要溶液及配置方法 | 第66页 |
| 6.2 实验方法 | 第66-67页 |
| 6.3 实验结果 | 第67-69页 |
| 6.3.1 4.1R基因缺失对迟发相皮肤过敏反应耳厚耳重的影响 | 第67页 |
| 6.3.2 4.1R基因缺失对迟发相皮肤过敏反应炎症细胞的影响 | 第67-68页 |
| 6.3.3 4.1R基因缺失对迟发相皮肤过敏反应IL-6 转录水平表达的影响 | 第68页 |
| 6.3.4 4.1R基因缺失对迟发相皮肤过敏反应肥大细胞脱颗粒率的影响 | 第68-69页 |
| 6.4 结果讨论 | 第69-71页 |
| 参考文献 | 第71-76页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
