| 英文缩略词表 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 第一部分 AQP4在佐剂性关节炎大鼠关节软骨中的表达及其病理意义 | 第14-33页 |
| 1 前言 | 第14-16页 |
| 2 实验材料 | 第16-17页 |
| 2.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.2 实验试剂 | 第16页 |
| 2.3 主要仪器 | 第16-17页 |
| 3 实验方法 | 第17-23页 |
| 3.1 AIA大鼠模型的构建 | 第17页 |
| 3.2 实验分组 | 第17页 |
| 3.3 足肿胀测定 | 第17页 |
| 3.4 关节组织病理学检查和组织病理学评分 | 第17-18页 |
| 3.5 大鼠关节软骨组织中AQP4免疫组化染色结果及其半定量分析 | 第18-19页 |
| 3.6 Western blot法检测大鼠膝关节软骨组织中AQP4的蛋白表达 | 第19-22页 |
| 3.7 大鼠关节软骨细胞的分离、培养及鉴定 | 第22-23页 |
| 3.8 Western blot法检测大鼠关节软骨细胞中AQP4的表达 | 第23页 |
| 4 结果 | 第23-30页 |
| 4.1 AIA大鼠模型的评价 | 第23-24页 |
| 4.2 AQP4在AIA大鼠关节软骨组织中异常高表达 | 第24-27页 |
| 4.3 AQP4密切参与大鼠AIA的病理过程 | 第27-28页 |
| 4.4 大鼠关节软骨细胞的培养和鉴定 | 第28页 |
| 4.5 免疫细胞化学染色观察AQP4在体外培养的关节软骨细胞中的表达 | 第28-29页 |
| 4.6 AQP4在体外培养的关节软骨细胞中的蛋白表达情况 | 第29-30页 |
| 5 讨论 | 第30-33页 |
| 第二部分 AQP4 siRNA对IL-1β诱导的大鼠关节软骨细胞凋亡的影响及机制研究 | 第33-50页 |
| 1 前言 | 第33-34页 |
| 2 实验材料 | 第34-35页 |
| 2.1 实验动物 | 第34页 |
| 2.2 药品与试剂 | 第34-35页 |
| 2.3 主要仪器 | 第35页 |
| 3 实验方法 | 第35-40页 |
| 3.1 大鼠关节软骨细胞的分离、培养和鉴定 | 第35页 |
| 3.2 AQP4 siRNA转染 | 第35-36页 |
| 3.3 软骨细胞的增殖（MTT法） | 第36页 |
| 3.4 Hoechst 33258 染色法检测软骨细胞的凋亡 | 第36-37页 |
| 3.5 Annexin V-FITC/PI流式双染法检测软骨细胞的凋亡 | 第37页 |
| 3.6 荧光实时定量法（Real-time PCR）检测Bcl-2，Bax和caspase3 基因表达 | 第37-40页 |
| 3.7 软骨细胞中AQP4、P-p38和p38的蛋白表达情况 | 第40页 |
| 3.8 统计学处理 | 第40页 |
| 4 结果 | 第40-48页 |
| 4.1 检测AQP4 siRNA转染效率 | 第40-41页 |
| 4.2 AQP4 siRNA能够抑制IL-1β诱导的软骨细胞AQP4蛋白表达升高 | 第41-42页 |
| 4.3 AQP4 siRNA对IL-1β诱导的软骨细胞增殖的影响 | 第42-43页 |
| 4.4 AQP4 siRNA缓解了IL-1β诱导的关节软骨细胞凋亡形态的改变 | 第43-44页 |
| 4.5 Annexin V-FITC/PI双染法检测AQP4 siRNA转染对IL-1β诱导的关节软骨细胞凋亡的影响 | 第44-46页 |
| 4.6 AQP4 siRNA调节IL-1β诱导软骨细胞中Bax，Bcl-2 和Caspase 3 mRNA的表达 | 第46页 |
| 4.7 AQP4 siRNA转染可抑制IL-1β诱导的p38 MAPK信号通路的活化 | 第46-48页 |
| 5 讨论 | 第48-50页 |
| 全文结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-59页 |
| 附录 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 综述 水通道蛋白与关节炎的研究进展 | 第61-71页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
