中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
前言 | 第12-14页 |
研究现状、成果 | 第12-13页 |
研究目的、方法 | 第13-14页 |
对象和方法 | 第14-29页 |
1.1 实验材料 | 第14-17页 |
1.1.1 临床组织标本及资料 | 第14页 |
1.1.2 实验仪器设备及材料 | 第14-16页 |
1.1.3 研究所用分析工具软件 | 第16-17页 |
1.2 实验方法 | 第17-28页 |
1.2.1 配制液体 | 第17页 |
1.2.2 细胞培养 | 第17-19页 |
1.2.3 MTT检测细胞生长曲线 | 第19页 |
1.2.4CIP2A的敲减 | 第19-20页 |
1.2.5 克隆形成实验 | 第20页 |
1.2.6 蛋白样本制备 | 第20-21页 |
1.2.7 免疫印记(Western Blot)技术 | 第21-25页 |
1.2.8 流式细胞术检测细胞凋亡及周期 | 第25-26页 |
1.2.9 孔雀石绿法测定PP2A活性 | 第26页 |
1.2.10 免疫组化 | 第26-28页 |
1.3 统计学方法 | 第28-29页 |
结果 | 第29-41页 |
2.1 入组患者基本临床特点 | 第29-30页 |
2.2 CIP2A在NSCLC患者中的表达情况 | 第30页 |
2.3 CIP2A过表达与NSCLC临床特征之间的关系 | 第30-31页 |
2.4 单因素分析影响 NSCLC患者的预后因素 | 第31-33页 |
2.5 多因素分析影响 NSCLC患者预后的独立影响因素 | 第33-34页 |
2.6 CIP2A在各细胞中的表达 | 第34页 |
2.7 Western Blot检测所用siRNA是否可以成功抑制CIP2A的表达 | 第34-35页 |
2.8 MTT检测敲减 CIP2A前后各细胞增殖情况的变化 | 第35-36页 |
2.9 克隆形成实验检测敲减CIP2A前后各细胞克隆形成的变化 | 第36页 |
2.10 流式细胞术检测不同处理对各细胞凋亡的影响 | 第36-37页 |
2.11 流式细胞术检测各细胞细胞周期的变化 | 第37-38页 |
2.12 Western Blot 检测敲减CIP2A后周期相关蛋白表达的变化 | 第38-39页 |
2.13 PP2A活性检测 | 第39-41页 |
讨论 | 第41-43页 |
结论 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-47页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第47-48页 |
综述 CIP2A在肿瘤发生发展中相关作用研究进展的回顾 | 第48-71页 |
综述参考文献 | 第61-71页 |
致谢 | 第71-72页 |
个人简历 | 第72页 |