| 英汉缩略词 | 第8-10页 |
| 中文摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-16页 |
| 前言 | 第17-20页 |
| 第一部分：Stanford A型主动脉夹层术后急性呼吸窘迫综合征的预后及危险因素研究 | 第20-36页 |
| 材料与方法 | 第21-26页 |
| 1. 临床资料收集 | 第21页 |
| 2. 诊断标准 | 第21-22页 |
| 3. 排除标准 | 第22页 |
| 4. 手术过程 | 第22-23页 |
| 4.1 三分支支架植入术 | 第22-23页 |
| 4.2 孙氏手术 | 第23页 |
| 5. 术后处理 | 第23-24页 |
| 5.1 基础治疗 | 第23-24页 |
| 5.2 特殊治疗 | 第24页 |
| 5.3 肺部及其它脏器系统功能评价 | 第24页 |
| 6. 酶联免疫吸附剂法检测血清TNF-α | 第24-25页 |
| 6.1 标本采集 | 第24-25页 |
| 6.2 检测步骤 | 第25页 |
| 7. 随访 | 第25页 |
| 8. 伦理 | 第25-26页 |
| 9. 统计学处理 | 第26页 |
| 结果 | 第26-32页 |
| 1. 一般临床资料 | 第26-27页 |
| 2. 手术过程 | 第27页 |
| 3. 术后情况 | 第27-30页 |
| 4. 血清TNF-α | 第30页 |
| 5. 多元logistic回归分析 | 第30-31页 |
| 6. 预后 | 第31-32页 |
| 讨论 | 第32-36页 |
| 第二部分:深低温停循环下的大鼠左下肺缺血再灌注损伤在体模型的建立 | 第36-49页 |
| 材料与方法 | 第36-42页 |
| 1. 实验动物 | 第36页 |
| 2. 实验药品与器材 | 第36-37页 |
| 2.1 设备与器械 | 第36-37页 |
| 2.2 药品与耗材 | 第37页 |
| 3. 大鼠在体缺血再灌注肺模型的建立 | 第37-41页 |
| 3.1 麻醉方法及术前准备 | 第37-38页 |
| 3.2 手术过程 | 第38页 |
| 3.3 血液标本采集及检测 | 第38-40页 |
| 3.3.1 采集方法 | 第38-39页 |
| 3.3.2 动脉血采集时间 | 第39页 |
| 3.3.3 检测项目 | 第39-40页 |
| 3.4 在体肺功能评估 | 第40页 |
| 3.4.1 评估时间点 | 第40页 |
| 3.4.2 评估方法 | 第40页 |
| 3.5 肺组织标本收集及损伤情况评估 | 第40-41页 |
| 3.5.1 标本收集 | 第40页 |
| 3.5.1 HE染色镜检观察肺部组织细胞形态学改变 | 第40页 |
| 3.5.2 肺组织予湿/干重值（W/D）测定 | 第40页 |
| 3.5.3 支气管肺泡灌洗液中的细胞总数和中性粒细胞数计数 | 第40-41页 |
| 4.模型评估 | 第41-42页 |
| 4.1 计算手术各阶段的时间及建模成功率 | 第41-42页 |
| 4.2 模型建立成功的标准 | 第42页 |
| 5. 统计学方法 | 第42页 |
| 结果 | 第42-47页 |
| 1. 手术时间、建模成功率及死亡率 | 第42页 |
| 2. 肺损伤情况评估 | 第42-47页 |
| 2.1 氧合功能评估 | 第42-43页 |
| 2.2 肺泡通气功能评估（动脉血PaCO_2） | 第43-44页 |
| 2.3 气道阻力评估 | 第44-45页 |
| 2.4 肺组织HE染色镜检 | 第45-46页 |
| 2.5 支气管肺泡灌洗液细胞计数 | 第46页 |
| 2.6 湿干重比率（W/D） | 第46-47页 |
| 讨论 | 第47-49页 |
| 1. 选择大鼠建立模型的原因 | 第47页 |
| 2. 采用左下肺叶制作缺血再灌注损伤的原因 | 第47页 |
| 3. 选择在体实验的目的 | 第47页 |
| 4. 深低温停循环后大鼠左下肺缺血再灌注损伤在体模型的应用价值及优势 | 第47-48页 |
| 5. 实验的难点和模型建立技巧 | 第48-49页 |
| 5.1 麻醉方法 | 第48页 |
| 5.1.1 麻醉药物剂量控制 | 第48页 |
| 5.1.2 气管插管技巧 | 第48页 |
| 5.2 颈动脉插管 | 第48-49页 |
| 5.3 深低温停循环时间的把握 | 第49页 |
| 第三部分:TNF-α对大鼠深低温停循环下肺缺血再灌注损伤的影响及机制研究 | 第49-81页 |
| 前言 | 第49-50页 |
| 材料与方法 | 第50-57页 |
| 1. 材料 | 第50-52页 |
| 1.1 实验动物 | 第50页 |
| 1.2 器械和设备 | 第50页 |
| 1.3 实验药品和试剂 | 第50-52页 |
| 2. 实验方法 | 第52-57页 |
| 2.1 实验对象及分组 | 第52-53页 |
| 2.2 留取标本时间 | 第53页 |
| 2.3 动脉血血气分析 | 第53页 |
| 2.4 气道阻力 | 第53页 |
| 2.5 湿/干重比率 | 第53页 |
| 2.6 生存曲线分析 | 第53页 |
| 2.7 组织病理学改变 | 第53-54页 |
| 2.7.1 肉眼 | 第53页 |
| 2.7.2 光镜 | 第53-54页 |
| 2.8 ELISA法测定大鼠血清TNF-α、IL-6/10 以及肺组织髓过氧化物酶、丙二醛、超氧化物歧化酶 | 第54页 |
| 2.9 免疫组织化学法检测肺组织TNF-α表达情况 | 第54-55页 |
| 2.10 凋亡检测 | 第55页 |
| 2.11 RT-PCR法测定肺组织中NFκB-mRNA、Caspase3-mRNA、Caspase8-mRNA的表达 | 第55-57页 |
| 3. 统计学处理 | 第57页 |
| 结果 | 第57-75页 |
| 1. HE染色组织切片镜检 | 第57-58页 |
| 1.1 肉眼 | 第57页 |
| 1.2 光镜 | 第57-58页 |
| 2. 肺氧合和通气功能 | 第58-61页 |
| 2.1 氧合指数 | 第58-59页 |
| 2.2. 气道阻力 | 第59-60页 |
| 2.3. 动脉血PaCO_2 | 第60-61页 |
| 3. 湿干重比值 | 第61-62页 |
| 4. 生存曲线描绘 | 第62页 |
| 5. 免疫组织化学法检测肺组织TNF-α表达位置、强度 | 第62-64页 |
| 6. 凋亡水平检测 | 第64-66页 |
| 7. ELISA法检测大鼠围术期血清炎症介质水平 | 第66-69页 |
| 7.1 TNF-α | 第66-67页 |
| 7.2 IL-6 | 第67-68页 |
| 7.3 IL-10 | 第68-69页 |
| 8. ELISA法检测三组大鼠左下肺叶组织匀浆中炎症介质以及髓过氧化物酶、丙二醛、超氧化物歧化酶 | 第69-72页 |
| 8.1 MPO | 第69-70页 |
| 8.2 MDA | 第70-71页 |
| 8.3 SOD | 第71-72页 |
| 9. RT-PCR法检测肺组织NF-κB、Caspase3/8的相对表达水平 | 第72-75页 |
| 9.1 NF-κB | 第72-73页 |
| 9.2 Caspase3 | 第73-74页 |
| 9.3 Caspase8 | 第74-75页 |
| 讨论 | 第75-81页 |
| 1. ARDS是影响Stanford A型AD患者术后生存质量的重要因素 | 第75页 |
| 2. TNF-α在ARDS发生、发展过程中的作用 | 第75-80页 |
| 2.1 TNF-α可通过激活中性粒细胞系统损伤肺组织 | 第76-77页 |
| 2.2 TNF-α通过参与氧自由基的代谢失衡造成肺损伤 | 第77-78页 |
| 2.3 TNF-α可通过激活全身炎症反应损伤肺组织 | 第78-80页 |
| 2.4 TNF-α可通过促进肺泡上皮细胞凋亡损伤肺组织 | 第80页 |
| 3. 疑点与解释 | 第80-81页 |
| 结论 | 第81页 |
| 展望与不足 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-91页 |
| 综述 | 第91-97页 |
| 综述参考文献 | 第95-97页 |
