| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 第一章 前言 | 第8-19页 |
| 1.1 黄腐酚及其研究现状 | 第8-10页 |
| 1.1.1 天然产物抗肿瘤活性及ROS | 第8页 |
| 1.1.2 黄腐酚 | 第8-9页 |
| 1.1.3 黄腐酚的生物活性 | 第9-10页 |
| 1.2 活性氧与自由基 | 第10-12页 |
| 1.2.1 自由基 | 第10页 |
| 1.2.2 自由基与机体的联系 | 第10-11页 |
| 1.2.3 活性氧 | 第11页 |
| 1.2.4 活性氧与机体的联系 | 第11-12页 |
| 1.3 活性氧与线粒体 | 第12-14页 |
| 1.3.1 线粒体的结构和功能 | 第12-13页 |
| 1.3.2 线粒体的结构和功能 | 第13-14页 |
| 1.4 活性氧与NADPH氧化酶 | 第14-17页 |
| 1.4.1 NADPH氧化酶 | 第14页 |
| 1.4.2 NADPH氧化酶的结构及组织分布 | 第14-15页 |
| 1.4.3 NADPH氧化酶产生活性氧 | 第15-16页 |
| 1.4.4 NADPH氧化酶的激活及信号转导 | 第16页 |
| 1.4.5 NADPH氧化酶的功能 | 第16-17页 |
| 1.5 立论依据 | 第17-19页 |
| 第二章 材料与方法 | 第19-25页 |
| 2.1 实验仪器 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-25页 |
| 2.2.1 细胞的复苏、培养和冻存 | 第19-20页 |
| 2.2.2 黄腐酚的配制和使用 | 第20页 |
| 2.2.3 台盼蓝细胞计数 | 第20-21页 |
| 2.2.4 细胞内ROS的测定和细胞状态分析 | 第21页 |
| 2.2.5 扫描电子显微镜观察细胞状态 | 第21页 |
| 2.2.6 激光共聚焦显微镜观察蛋白活化 | 第21-22页 |
| 2.2.7 细胞蛋白提取、测定和制备 | 第22-23页 |
| 2.2.8 蛋白质印迹(Western Blotting) | 第23-25页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第25-37页 |
| 3.1 黄腐酚抑制HL-60细胞增殖 | 第25-26页 |
| 3.2 NAC减缓黄腐酚对HL-60细胞增殖的抑制 | 第26-28页 |
| 3.3 黄腐酚促氧化机制研究需要考虑合适的细胞模型体系 | 第28-33页 |
| 3.3.1 流式细胞术研究发现黄腐酚促进HL-60细胞产生ROS存在明显的拐点 | 第28页 |
| 3.3.2 无血清体系会对细胞造成较大的损害 | 第28-29页 |
| 3.3.3 扫描电镜结果显示HL-60细胞出现明显的固缩现象 | 第29-30页 |
| 3.3.4 10%血清体系细胞状态良好 | 第30-31页 |
| 3.3.5 10%血清体系黄腐酚促氧化活性与无血清体系明显不同 | 第31页 |
| 3.3.6 不同浓度血清对黄腐酚促氧化的影响 | 第31-33页 |
| 3.3.7 黄腐酚促氧化细胞模型体系的确立 | 第33页 |
| 3.4 DPI抑制黄腐酚的促氧化活性,L-NMMA无作用 | 第33-34页 |
| 3.5 黄腐酚促进HL-60细胞NADPH氧化酶的激活 | 第34-35页 |
| 3.6 黄腐酚调控NADPH氧化酶的表达 | 第35-37页 |
| 第四章 结论 | 第37-41页 |
| 4.1 主要结论 | 第37-39页 |
| 4.1.1 黄腐酚促氧化细胞模型体系的确立 | 第37-38页 |
| 4.1.2 本文主要结论 | 第38-39页 |
| 4.2 研究展望 | 第39-41页 |
| 参考文献 | 第41-46页 |
| 在学期间的研究成果 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47页 |
