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生物质降解相关酶基因重组和高效表达技术的研究

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
第一章 绪论第11-31页
    1.1 生物质资源的研究现状第11-18页
        1.1.1 纤维素第11-14页
        1.1.2 半纤维素第14-18页
    1.2 大肠杆菌表达系统及其研究进展第18-21页
        1.2.1 大肠杆菌表达系统在基因工程中的应用第18-19页
        1.2.2 常用的大肠杆菌表达载体第19-20页
        1.2.3 pHsh系统第20-21页
    1.3 厌氧技术简介第21-26页
        1.3.1 气体除氧第21-22页
        1.3.2 厌氧培养瓶和试管第22-24页
        1.3.3 厌氧菌的固体培养基第24页
        1.3.4 厌氧微生物的培养第24-25页
        1.3.5 厌氧微生物的菌种保藏第25-26页
    1.4 外源蛋白在大肠杆菌中表达形成包涵体第26-27页
        1.4.1 大肠杆菌中高效表达的策略第26页
        1.4.2 外源蛋白在大肠杆菌中表达形成包涵体第26-27页
    1.5 本研究的立题依据、目的和意义及主要内容第27-31页
        1.5.1 立题依据第27-28页
        1.5.2 研究目的和意义第28-30页
        1.5.3 主要研究内容第30-31页
第二章 利用pHsh高效表达耐热纤维素酶第31-57页
    2.1 材料第31-36页
        2.1.1 菌株与质粒第31页
        2.1.2 培养基第31-33页
        2.1.3 培养条件第33-34页
        2.1.4 主要试剂及其来源第34-35页
        2.1.5 主要设备及其来源第35-36页
        2.1.6 DNA引物合成和DNA测序服务第36页
    2.2 方法第36-45页
        2.2.1 热纤梭菌(C. thermocellum ATCC 27405)厌氧瓶液体培养第36页
        2.2.2 热纤梭菌(C. thermocellum ATCC 27405)基因组DNA的提取第36页
        2.2.3 感受态细胞的制备第36-37页
        2.2.4 电转化第37页
        2.2.5 DNA酶切、连接及磷酸化反应、核酸浓缩第37页
        2.2.6 碱变性法抽提质粒第37-38页
        2.2.7 热纤梭菌(C.thermocellum ATCC 27405)来源的纤维素酶基因的克隆第38页
        2.2.8 重组表达质粒pHsh-celD mRNA二级结构的优化第38-39页
        2.2.9 重组表达质粒pHsh-celD Ⅰ N端密码子的优化第39-40页
        2.2.10 重组菌的培养及重组酶的诱导表达第40页
        2.2.11 重组纤维素酶的分离纯化第40-41页
        2.2.12 Bradford法测定蛋白浓度第41-42页
        2.2.13 聚丙烯酰胺凝胶电泳第42-43页
        2.2.14 纤维素酶酶活的测定第43-44页
        2.2.15 重组纤维素酶的性质分析第44-45页
    2.3 结果与分析第45-54页
        2.3.1 纤维素酶序列分析及克隆第45-47页
        2.3.2 重组表达质粒二级结构的优化第47-48页
        2.3.3 重组表达质粒pHsh-celD Ⅰ N端密码子的优化第48-50页
        2.3.4 重组纤维素酶的表达及检测第50-51页
        2.3.5 重组纤维素酶的酶活检测第51-52页
        2.3.6 重组纤维素酶的酶学性质第52-54页
    2.4 讨论第54-57页
第三章 多功能半纤维素酶的构建及其应用研究第57-81页
    3.1 材料第57-60页
        3.1.1 菌株与质粒第57页
        3.1.2 培养基第57页
        3.1.3 培养条件第57-58页
        3.1.4 主要试剂及其来源第58-59页
        3.1.5 主要仪器设备及其来源第59-60页
        3.1.6 DNA引物合成和DNA测序服务第60页
    3.2 方法第60-68页
        3.2.1 T. ethanolicus JW200厌氧瓶液体培养第60页
        3.2.2 T. ethanolicus JW200基因组的提取第60-61页
        3.2.3 大肠杆菌相关的实验方法第61页
        3.2.4 重组质粒的构建第61-62页
        3.2.5 重组菌的培养及重组酶的诱导表达第62-63页
        3.2.6 蛋白质浓度的测定及SDS-PAGE凝胶电泳第63页
        3.2.7 Ni-NTA Agarose亲和层析纯化第63页
        3.2.8 活性着色Xyn-SDS-PAGE第63页
        3.2.9 木糖苷酶、阿拉伯糖苷酶和木聚糖酶活性测定第63-65页
        3.2.10 游离酶及融合酶的酶学性质测定及动力学参数测定第65-66页
        3.2.11 游离酶及融合酶的酶解实验第66-67页
        3.2.12 DNS法检测还原糖第67-68页
    3.3 结果与分析第68-79页
        3.3.1 T.ethanolicus JW200基因组的提取第68页
        3.3.2 重组质粒的构建第68-72页
        3.3.3 游离酶与融合酶的表达以及纯化第72-73页
        3.3.4 活性着色Xyn-SDS-PAGE分析第73-74页
        3.3.5 游离酶与融合酶的酶学性质分析第74-78页
        3.3.6 融合酶的酶解实验第78-79页
    3.4 讨论第79-81页
第四章 利用pHsh-ex系统可溶性高效表达半纤维素酶的研究第81-102页
    4.1 材料第81-84页
        4.1.1 菌株与质粒第81页
        4.1.2 培养基及培养条件第81-82页
        4.1.3 主要试剂及其来源第82-83页
        4.1.4 主要仪器设备及其来源第83-84页
        4.1.5 DNA引物合成和DNA测序服务第84页
    4.2 方法第84-88页
        4.2.1 一般基因操作方法第84页
        4.2.2 重组质粒的构建第84-86页
        4.2.3 重组质粒的诱导表达第86-87页
        4.2.4 周质空间蛋白的提取方法第87页
        4.2.5 DEAE Sepharose Fast Flow阴离子交换层析第87页
        4.2.6 重组酶的测定方法第87页
        4.2.7 蛋白质浓度的测定及SDS-PAGE凝胶电泳第87-88页
    4.3 结果与分析第88-98页
        4.3.1 重组质粒的构建第88-94页
        4.3.2 重组质粒的诱导表达第94-98页
    4.4 讨论第98-102页
第五章 结论第102-104页
参考文献第104-113页
在读期间发表的学术论文及研究成果第113-115页
致谢第115页

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