中文摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
英文缩略词 | 第7-10页 |
第一章 前言 | 第10-13页 |
第二章 材料与方法 | 第13-28页 |
·材料 | 第13-15页 |
·组织 | 第13页 |
·主要试剂 | 第13-14页 |
·主要仪器设备 | 第14-15页 |
·实验室配制溶液 | 第15页 |
·方法 | 第15-28页 |
·细胞提取及培养 | 第15-18页 |
·细胞增殖实验及表型鉴定 | 第18-19页 |
·细胞干预及转染 | 第19-20页 |
·实时荧光定量反转录-聚合酶链反应 | 第20-24页 |
·Western blot | 第24-28页 |
·ELISA | 第28页 |
·统计分析 | 第28页 |
第三章 结果 | 第28-36页 |
·所提取hUC-MSCs的形态学观察 | 第28-29页 |
·所提取hUC-MSCs的增殖能力及表面抗原分析 | 第29-30页 |
·所提取hUC-MSCs的生长曲线分析 | 第29-30页 |
·所提取hUC-MSCs的细胞表面抗原特性 | 第30页 |
·所提取hUC-MSCs的细胞周期分析 | 第30页 |
·氯化钴模拟化学低氧的浓度选择结果 | 第30-33页 |
·CoCl_2对hUC-MSCs增殖能力的影响 | 第30-32页 |
·CoCl_2对hUC-MSCs细胞周期的影响 | 第32-33页 |
·MiR-155转染效率的分析结果 | 第33页 |
·RT-qPCR法检测各组hUC-MSCs中IL-6、IL-8、iNOS、SDF-1、TGF-β、HIF-1α m RNA的表达情况 | 第33-34页 |
·Western blot法检测各组MSCs中i NOS及HIF-1α 蛋白的表达情况 | 第34-35页 |
·ELISA法检测各组hUC-MSCs上清中IL-6、IL-8、SDF-1、TGF-β 细胞因子的表达情况 | 第35-36页 |
第四章 讨论 | 第36-40页 |
·人脐带源性MSCs的分离与鉴定 | 第36页 |
·氯化钴模拟低氧环境对hUC-MSCs的研究 | 第36-37页 |
·Mi R-155在hUC-MSCs中的研究 | 第37-38页 |
·Mi R-155在低氧环境中对hUC-MSCs的研究 | 第38-40页 |
第五章 结论 | 第40-41页 |
·结论 | 第40页 |
·研究缺陷与展望 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-45页 |
综述 | 第45-52页 |
参考文献 | 第49-52页 |
在学期间的研究成果 | 第52-53页 |
致谢 | 第53页 |