| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-12页 |
| 缩略语表 | 第12-13页 |
| 1 前言 | 第13-25页 |
| ·内蒙古绒山羊的简介 | 第13页 |
| ·毛囊干细胞的介绍 | 第13-19页 |
| ·毛囊干细胞的概念及生物学特性 | 第13页 |
| ·毛囊干细胞的增殖与分化特性 | 第13-17页 |
| ·毛囊干细胞的相关标记物 | 第17-19页 |
| ·皮肤毛囊发育分子调控研究 | 第19-21页 |
| ·毛囊形态发生过程及其调控 | 第19-20页 |
| ·毛囊周期性变化过程中的分子调控 | 第20-21页 |
| ·神经肽P物质(SP)的简介 | 第21-23页 |
| ·神经肽P物质的发现及生物学特点 | 第21-22页 |
| ·神经肽P物质的分布 | 第22页 |
| ·神经肽P物质的作用 | 第22-23页 |
| ·本研究目的和意义 | 第23-25页 |
| 2 SP最适增殖浓度的探索 | 第25-31页 |
| ·实验材料 | 第25页 |
| ·实验材料 | 第25页 |
| ·实验仪器及耗材 | 第25页 |
| ·实验试剂及主要试剂配方 | 第25页 |
| ·实验方法 | 第25-26页 |
| ·毛囊干细胞的解冻 | 第25页 |
| ·SP对毛囊干细胞最适增殖浓度的探究 | 第25-26页 |
| ·结果与分析 | 第26-29页 |
| ·SP刺激后毛囊干细胞形态观察 | 第26-28页 |
| ·SP刺激后毛囊干细胞增殖活性曲线 | 第28-29页 |
| ·讨论 | 第29-30页 |
| ·小结 | 第30-31页 |
| 3 SP对毛囊干细胞β1整合素和SOX9基因的表达影响 | 第31-45页 |
| ·实验材料 | 第31页 |
| ·实验材料 | 第31页 |
| ·实验仪器及实验耗材 | 第31页 |
| ·实验试剂及主要试剂配方 | 第31页 |
| ·实验方法 | 第31-35页 |
| ·SP处理毛囊干细胞 | 第31页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第31-32页 |
| ·荧光定量PCR引物设计与合成 | 第32-33页 |
| ·PT-PCR扩增 | 第33-34页 |
| ·相对定量PCR检测β1整合素和SOX9基因在不同组中的表达 | 第34-35页 |
| ·结果与分析 | 第35-44页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第35页 |
| ·SP刺激后毛囊干细胞形态观察 | 第35-38页 |
| ·β1整合素和SOX9基因片段的特异性扩增 | 第38-39页 |
| ·β1整合素、SOX9基因、β-actin和GADPH的标准曲线及其溶解曲线 | 第39-40页 |
| ·SP刺激后毛囊干细胞β1整合素和SOX9基因表达量与空白对照组表达量的关系 | 第40-44页 |
| ·讨论 | 第44页 |
| ·小结 | 第44-45页 |
| 4 SP对毛囊干细胞β-catenin和BMP2/4基因的表达影响 | 第45-56页 |
| ·实验材料 | 第45页 |
| ·实验材料 | 第45页 |
| ·实验仪器及实验耗材 | 第45页 |
| ·实验试剂及主要试剂配方 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-47页 |
| ·SP处理毛囊干细胞 | 第45页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第45-46页 |
| ·荧光定量PCR引物设计与合成 | 第46页 |
| ·PT-PCR扩增 | 第46-47页 |
| ·相对定量PCR检测β-catenin和BMP2/4基因在不同组中的表达 | 第47页 |
| ·结果与分析 | 第47-54页 |
| ·β-catenin和BMP2/4基因片段的特异性扩增 | 第47-48页 |
| ·β-atenin和BMP2/4基因的标准曲线及其溶解曲线 | 第48-49页 |
| ·SP刺激后毛囊干细胞β-catenin和BMP2/4基因表达量与空白对照组表达量的关系 | 第49-54页 |
| ·讨论 | 第54-55页 |
| ·小结 | 第55-56页 |
| 5 SP对毛囊干细胞KAP7和KAP8基因的表达影响 | 第56-64页 |
| ·实验材料 | 第56页 |
| ·实验材料 | 第56页 |
| ·实验仪器及实验耗材 | 第56页 |
| ·实验试剂及主要试剂配方 | 第56页 |
| ·实验方法 | 第56-58页 |
| ·SP处理毛囊干细胞 | 第56页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第56页 |
| ·荧光定量PCR引物设计与合成 | 第56-57页 |
| ·PT-PCR扩增 | 第57页 |
| ·相对定量PCR检测KAP7和KAP8基因在不同组中的表达 | 第57-58页 |
| ·结果与分析 | 第58-63页 |
| ·KAP7和KAP8基因片段的特异性扩增 | 第58页 |
| ·KAP7和KAP8基因的标准曲线及其溶解曲线 | 第58-59页 |
| ·SP刺激后毛囊干细胞KAP7和KAP8基因表达量与空白对照组表达量的关系 | 第59-63页 |
| ·讨论 | 第63页 |
| ·小结 | 第63-64页 |
| 6 SP对毛囊干细胞K1和K10基因的表达影响 | 第64-72页 |
| ·实验材料 | 第64页 |
| ·实验材料 | 第64页 |
| ·实验仪器及实验耗材 | 第64页 |
| ·实验试剂及主要试剂配方 | 第64页 |
| ·实验方法 | 第64-66页 |
| ·SP处理毛囊干细胞 | 第64页 |
| ·细胞总RNA的提取 | 第64页 |
| ·荧光定量PCR引物设计与合成 | 第64-65页 |
| ·PT-PCR扩增 | 第65页 |
| ·相对定量PCR检测K1和K10基因在不同组中的表达 | 第65-66页 |
| ·结果与分析 | 第66-70页 |
| ·K1和K10基因片段的特异性扩增 | 第66页 |
| ·K1和K10基因的标准曲线及其溶解曲线 | 第66-67页 |
| ·SP刺激后毛囊干细胞K1和K10基因表达量与空白对照组表达量的关系 | 第67-70页 |
| ·讨论 | 第70-71页 |
| ·小结 | 第71-72页 |
| 7 全文总结 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-78页 |
| 作者简介 | 第78页 |
