| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 1 绪论 | 第10-22页 |
| ·分子标记技术在鱼类群体遗传多样性研究中的应用 | 第10-17页 |
| ·限制性片断长度多态性标记(RFLP) | 第10-11页 |
| ·随机扩展片段长度多态性(RAPD) | 第11-12页 |
| ·扩增片段长度多态标记(AFLP) | 第12-13页 |
| ·单核苷酸多态性(SNP) | 第13页 |
| ·简单相关序列扩增多态性(SRAP) | 第13-14页 |
| ·简单序列重复(SSR) | 第14-15页 |
| ·重复序列区间扩增(ISSR) | 第15-16页 |
| ·靶位区域扩增多态性(TRAP) | 第16-17页 |
| ·鱼类性别相关基因及性别特异标记的研究进展 | 第17-21页 |
| ·鱼类性别决定基因及相关基因的研究概况 | 第17-19页 |
| ·鱼类性别相关分子标记的研究概况 | 第19-21页 |
| ·本研究目的及意义 | 第21-22页 |
| 2 黄颡鱼ISSR-PCR体系的建立及优化 | 第22-28页 |
| ·材料与方法 | 第22-23页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·黄颡鱼基因组DNA的提取及定量 | 第22-23页 |
| ·黄颡鱼ISSR-PCR反应体系的正交优化 | 第23-24页 |
| ·ISSR-PCR反应因素水平的确定与正交表的设计 | 第23页 |
| ·ISSR-PCR的电泳检测 | 第23-24页 |
| ·结果与分析 | 第24-26页 |
| ·黄颡鱼ISSR-PCR正交实验结果 | 第24页 |
| ·各因素对ISSR-PCR反应影响 | 第24-25页 |
| ·ISSR-PCR退火温度的选择 | 第25页 |
| ·交优化体系的验证 | 第25-26页 |
| ·讨论 | 第26-28页 |
| 3 黄颡鱼群体遗传结构的ISSR分析 | 第28-35页 |
| ·材料与方法 | 第28-29页 |
| ·实验材料 | 第28页 |
| ·黄颡鱼基因组DNA的ISSR-PCR扩增 | 第28页 |
| ·ISSR数据处理 | 第28-29页 |
| ·结果与分析 | 第29-32页 |
| ·ISSR-PCR扩增结果 | 第29-30页 |
| ·黄颡鱼群体的遗传多样性参数 | 第30-31页 |
| ·黄颡鱼群体的遗传分化指数和基因流指数 | 第31页 |
| ·黄颡鱼群体的遗传相似系数与遗传距离 | 第31-32页 |
| ·聚类分析 | 第32页 |
| ·讨论 | 第32-35页 |
| 4 黄颡鱼TRAP-PCR反应体系的建立及优化 | 第35-39页 |
| ·材料与方法 | 第35页 |
| ·黄颡鱼TRAP-PCR反应体系的正交优化 | 第35-36页 |
| ·TRAP-PCR反应因素水平的确定与正交表的设计 | 第35页 |
| ·TRAP-PCR扩增及检测 | 第35-36页 |
| ·结果与分析 | 第36-37页 |
| ·黄颡鱼TRAP-PCR正交实验结果 | 第36页 |
| ·各因素对TRAP-PCR反应的影响 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 5 黄颡鱼群体遗传结构的TRAP分析 | 第39-45页 |
| ·材料与方法 | 第39-40页 |
| ·实验材料 | 第39页 |
| ·黄颡鱼基因组DNA的TRAP-PCR扩增 | 第39页 |
| ·TRAP数据分析 | 第39-40页 |
| ·结果与分析 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-45页 |
| ·黄颡鱼群体的遗传多样性 | 第41页 |
| ·黄颡鱼群体的遗传分化 | 第41页 |
| ·黄颡鱼群体遗传结构的ISSR和TRAP比较分析 | 第41-45页 |
| 6 黄颡鱼性别特异TRAP和ISSR分子标记筛选 | 第45-51页 |
| 前言 | 第45页 |
| ·材料与方法 | 第45-46页 |
| ·实验材料 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-46页 |
| ·结果与分析 | 第46-49页 |
| ·黄颡鱼雌雄个体遗传差异的TRAP分析 | 第46-47页 |
| ·黄颡鱼性别特异TRAP标记的筛选 | 第47-48页 |
| ·黄颡鱼雌雄个体遗传差异的ISSR分析 | 第48-49页 |
| ·黄颡鱼性别特异ISSR标记的筛选 | 第49页 |
| ·讨论 | 第49-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |