| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 1 绪论 | 第9-21页 |
| ·大麻哈鱼概述 | 第9-11页 |
| ·大麻哈鱼分布与食性 | 第9页 |
| ·大麻哈鱼形态特征与生殖洄游 | 第9页 |
| ·大麻哈鱼研究现状 | 第9-11页 |
| ·遗传多样性概述 | 第11-12页 |
| ·遗传多样性的含义 | 第11页 |
| ·研究遗传多样性的意义 | 第11-12页 |
| ·宏观水平的遗传标记 | 第12-13页 |
| ·细胞学水平的遗传标记 | 第13-14页 |
| ·蛋白质水平的遗传标记 | 第14-16页 |
| ·同工酶概述 | 第14页 |
| ·同工酶技术在鱼类早期发育学中的应用 | 第14页 |
| ·同工酶技术在鱼类系统发育学中的应用 | 第14-15页 |
| ·同工酶技术在鱼类分类鉴定中的应用 | 第15页 |
| ·同工酶技术在鱼类组织特异性研究中的应用 | 第15页 |
| ·同工酶技术在鱼类种群生化遗传研究中的应用 | 第15-16页 |
| ·同工酶技术在水产上应用存在的问题与展望 | 第16页 |
| ·分子水平的遗传标记 | 第16-20页 |
| ·SRAP标记概述 | 第16-17页 |
| ·SRAP标记的优点 | 第17-18页 |
| ·SRAP标记的体系优化研究 | 第18页 |
| ·SRAP在遗传多样性研究中的应用 | 第18-19页 |
| ·SRAP在比较基因组学中的应用 | 第19页 |
| ·SRAP在构建遗传图谱中的应用 | 第19页 |
| ·SRAP在重要性状基因标记中的应用 | 第19-20页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第20-21页 |
| 2 大麻哈鱼SRAP-PCR反应体系的建立 | 第21-30页 |
| ·实验材料与试剂 | 第21-22页 |
| ·实验材料 | 第21页 |
| ·实验试剂 | 第21-22页 |
| ·实验仪器 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-25页 |
| ·基因组DNA的制备 | 第22-23页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳检测 | 第23-24页 |
| ·SRAP引物筛选 | 第24页 |
| ·SRAP-PCR反应体系正交优化 | 第24-25页 |
| ·单因子试验进一步优化反应体系 | 第25页 |
| ·实验结果与分析 | 第25-29页 |
| ·引物筛选结果与分析 | 第25-26页 |
| ·正交试验结果及统计学分析 | 第26-27页 |
| ·单因子试验结果与分析 | 第27-29页 |
| ·本章小结 | 第29-30页 |
| 3 大麻哈鱼群体遗传多样性的SRAP研究 | 第30-36页 |
| ·实验材料与试剂 | 第30页 |
| ·实验方法 | 第30页 |
| ·大麻哈鱼群体遗传多样性水平分析 | 第30页 |
| ·大麻哈鱼群体间遗传分化分析 | 第30页 |
| ·实验结果与分析 | 第30-35页 |
| ·大麻哈鱼群体遗传多样性水平分析 | 第31-34页 |
| ·大麻哈鱼群体间遗传分化分析 | 第34-35页 |
| ·本章小结 | 第35-36页 |
| 4 大麻哈鱼群体遗传多样性的同工酶研究 | 第36-43页 |
| ·实验材料与试剂 | 第36-37页 |
| ·实验材料 | 第36页 |
| ·实验试剂 | 第36页 |
| ·实验仪器 | 第36-37页 |
| ·实验方法 | 第37-39页 |
| ·组织酶液的制备 | 第37页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳的检测 | 第37页 |
| ·特异性酶染液的配制 | 第37-39页 |
| ·同工酶数据处理 | 第39页 |
| ·实验结果与分析 | 第39-42页 |
| ·大麻哈鱼同工酶的组织特异性 | 第39页 |
| ·大麻哈鱼群体遗传多样性研究 | 第39-42页 |
| ·本章小结 | 第42-43页 |
| 5 讨论 | 第43-47页 |
| ·大麻哈鱼SRAP-PCR反应体系的优化 | 第43页 |
| ·SRAP标记对大麻哈鱼群体遗传多样性的评价 | 第43-44页 |
| ·同工酶标记对大麻哈鱼群体遗传多样性的评价 | 第44-45页 |
| ·SRAP标记和同工酶分析比较 | 第45页 |
| ·大麻哈鱼野生群体与养殖群体遗传多样性对比 | 第45-46页 |
| ·SRAP标记在大麻哈鱼群体遗传多样性研究中的适用性分析 | 第46-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |