| 中文摘要 | 第1-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 英文缩略语 | 第15-16页 |
| 文献综述 | 第16-23页 |
| 1 化学成分 | 第16-18页 |
| 2 药理作用及机制 | 第18-20页 |
| 3 体内过程 | 第20-21页 |
| 4 配伍研究 | 第21-22页 |
| 5 展望 | 第22-23页 |
| 第一部分 隐丹参酮在生物样品中测定方法的建立 | 第23-34页 |
| 一 材料与方法 | 第23-27页 |
| 1.UPLC 法测定 Caco-2 内隐丹参酮浓度的方法建立 | 第23-24页 |
| ·试剂与仪器 | 第23页 |
| ·分析条件 | 第23页 |
| ·细胞样品的处理 | 第23页 |
| ·方法学考察 | 第23-24页 |
| 2. LC-MS/MS 法测定大鼠血浆中 CTS 浓度的方法建立 | 第24-27页 |
| ·试剂与仪器 | 第24-25页 |
| ·分析条件 | 第25页 |
| ·实验动物 | 第25页 |
| ·血浆样品的制备 | 第25页 |
| ·方法学考察 | 第25-27页 |
| 二 结果 | 第27-31页 |
| 1. UPLC 法测定 Caco-2 内 CTS 浓度的方法学考证 | 第27-29页 |
| ·标准曲线的制备和最低检测限 | 第27页 |
| ·方法的专属性 | 第27页 |
| ·方法的回收率 | 第27-28页 |
| ·方法的精密度 | 第28页 |
| ·冻融稳定性 | 第28页 |
| ·检测方法的质控 | 第28-29页 |
| 2. LC-MS/MS 法测定大鼠血浆中 CTS 浓度的方法学考证 | 第29-31页 |
| ·标准曲线与最低检测限 | 第29页 |
| ·方法的专属性 | 第29-30页 |
| ·提取回收率 | 第30页 |
| ·方法的精密度 | 第30页 |
| ·冻融稳定性 | 第30-31页 |
| ·基质效应 | 第31页 |
| ·检测方法的质控 | 第31页 |
| 三 讨论 | 第31-34页 |
| 1. 检测方法的选择 | 第31-32页 |
| 2. Caco-2 细胞中检测条件的选择 | 第32页 |
| 3. 血浆样品中检测条件的选择 | 第32页 |
| 4. 小结 | 第32-34页 |
| 第二部分 降香挥发油和降香黄酮-柚皮素对丹参中的隐丹参酮和丹 酚酸 B 的吸收动力学影响研究 | 第34-50页 |
| 一 材料与方法 | 第34-39页 |
| 1. 丹参浸膏中 CTS 和 SalB 含量的测定 | 第34-35页 |
| ·试剂与仪器 | 第34页 |
| ·供试品溶液的制备 | 第34-35页 |
| ·方法学考察 | 第35页 |
| 2. 降香挥发油含量和成分的检测 | 第35-36页 |
| ·仪器与试药 | 第35-36页 |
| ·供试品溶液的制备 | 第36页 |
| ·挥发油饱和Hanks’样品的制备 | 第36页 |
| ·挥发油饱和培养基的制备 | 第36页 |
| ·气相色谱试验 | 第36页 |
| ·气质试验 | 第36页 |
| 3. 降香挥发油对隐丹参酮和丹酚酸B 的吸收动力学影响 | 第36-38页 |
| ·试剂与仪器 | 第36-37页 |
| ·实验动物 | 第37页 |
| ·供试品溶液的制备 | 第37-38页 |
| 4. 柚皮素对隐丹参酮和丹酚酸B 的吸收动力学影响 | 第38-39页 |
| ·试剂与仪器 | 第38页 |
| ·实验动物 | 第38页 |
| ·供试品溶液的制备 | 第38页 |
| ·动物实验设计 | 第38页 |
| ·血浆样品的制备 | 第38-39页 |
| ·色谱条件 | 第39页 |
| 二.结果 | 第39-48页 |
| 1. 丹参浸膏中 CTS 和 SalB 标准曲线和最低检测限 | 第39页 |
| 2. 丹参浸膏中 CTS 和 SalB 方法的专属性 | 第39-40页 |
| 3. 丹参浸膏中丹酚酸B 和隐丹参酮的含量 | 第40-41页 |
| 4. 气相色谱试验 | 第41-42页 |
| 5. 气-质联用试验 | 第42-44页 |
| 6. 含药血浆测定结果 | 第44页 |
| 7. 降香挥发油对 CTS 和 SalB 的吸收动力学影响研究结果 | 第44-46页 |
| 8. 柚皮素对 CTS 和 SalB 的吸收动力学影响研究结果 | 第46-48页 |
| 三. 讨论 | 第48-50页 |
| 1. 丹参浸膏中 CTS 和 SalB 含量测定实验条件的选择 | 第48页 |
| 2. 气相色谱和气-质联用测定降香挥发油的成分与含量 | 第48-49页 |
| 3. 单用药与合用药的对比研究 | 第49页 |
| 4. 小结 | 第49-50页 |
| 第三部分 降香挥发油和黄酮对丹酚酸 B 和隐丹参酮分别在 Caco-2 和 MDCK 细胞中的摄取影响研究 | 第50-68页 |
| 一 材料与方法 | 第50-57页 |
| 1. 试剂、仪器与药液配制 | 第50-52页 |
| 2. Caco-2 和MDCK 细胞的培养和单层模型的建立 | 第52页 |
| 3. 蛋白印迹检测P-gp 的表达 | 第52-53页 |
| 4. P-gp 功能活性分析 | 第53页 |
| 5. 考马斯亮蓝G-250 显色法测定蛋白含量 | 第53-54页 |
| 6. 降香挥发油、丹酚酸B、隐丹参酮和柚皮素的细胞毒性试验 | 第54页 |
| 7. CTS 和 SalB 分别在 Caco-2 和 MDCK 细胞中的摄取特性 | 第54-55页 |
| 8. 降香挥发油对 CTS、SalB 在 Caco-2 和 MDCK 细胞中的摄取影响 | 第55-56页 |
| 9. 柚皮素对 SalB、CTS 在 Caco-2 和 MDCK 细胞中摄取影响 | 第56-57页 |
| 二 结果 | 第57-65页 |
| 1. CaCo-2 和 MDCK 细胞模型的建立 | 第57页 |
| 2. P-gp 蛋白表达测定 | 第57-58页 |
| 3. P-gp 功能活性分析 | 第58页 |
| 4. 考马斯亮蓝G-250 显色法测定蛋白含量 | 第58-59页 |
| 5. MTT 试验结果 | 第59页 |
| 6. CTS 和 SalB 在 CaCo-2 和 MDCK 细胞中的摄取试验 | 第59-62页 |
| 7. 蛋白印迹P-gp 的表达 | 第62-63页 |
| 8. 降香挥发油对 CTS 和 SalB 在 Caco-2 和 MDCK 细胞中的摄取影响 | 第63-64页 |
| 9. 降香挥发油和柚皮素对 CTS 和 SalB 在 Caco-2 细胞中的摄取影响对比 | 第64-65页 |
| 三 讨论 | 第65-68页 |
| 1. 细胞模型的建立 | 第66页 |
| 2. Caco-2 细胞中P-gp 的表达 | 第66页 |
| 3. CTS 和SalB 分别在Caco-2 和MDCK 模型中的摄取特性 | 第66页 |
| 4. 降香挥发油和柚皮素在细胞模型上对CTS 和SalB 摄取的影响 | 第66-67页 |
| 5. 小结 | 第67-68页 |
| 结语 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-74页 |
