| 致谢 | 第1-4页 |
| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-12页 |
| 引言 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-21页 |
| ·植物耐盐机理的研究 | 第13-16页 |
| ·盐胁迫对植物的影响 | 第13-14页 |
| ·盐胁迫对植物形态发育的影响 | 第13页 |
| ·盐胁迫对植物生理生化代谢的影响 | 第13页 |
| ·盐胁迫对植物内源激素的影响 | 第13-14页 |
| ·植物耐盐机理的研究 | 第14-16页 |
| ·拒盐和离子选择性吸收 | 第14页 |
| ·离子平衡和区域化 | 第14-15页 |
| ·渗透调节 | 第15页 |
| ·清除活性氧的膜保护系统 | 第15-16页 |
| ·植物蛋白质组的研究进展 | 第16-18页 |
| ·植物蛋白质组研究相关技术 | 第16-17页 |
| ·双向电泳(2-DE) | 第16页 |
| ·图像分析软件 | 第16-17页 |
| ·双向电泳(2-DE)与质谱(MS)联用 | 第17页 |
| ·酵母杂交技术 | 第17页 |
| ·蛋白质芯片技术 | 第17页 |
| ·双向荧光差异凝胶电泳 | 第17页 |
| ·液质联仪 | 第17页 |
| ·植物蛋白质组对盐胁迫的响应 | 第17-18页 |
| ·杨树耐盐机理的研究进展 | 第18-19页 |
| ·胞外蛋白的研究进展 | 第19-20页 |
| ·课题来源及研究目的和意义 | 第20-21页 |
| 第二章 NaCl 胁迫对两个品种杨树保护酶系统的影响 | 第21-35页 |
| ·材料与方法 | 第21页 |
| ·试验材料 | 第21页 |
| ·实验试剂 | 第21页 |
| ·实验仪器 | 第21页 |
| ·实验主要试剂配制 | 第21页 |
| ·试验方法 | 第21-25页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第22页 |
| ·过氧化氢(H2O2)含量的测定 | 第22-23页 |
| ·可溶性蛋白含量的测定 | 第23页 |
| ·丙二醛(MDA)含量的测定 | 第23-24页 |
| ·超氧化物歧化酶超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第24页 |
| ·过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第24页 |
| ·过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第24-25页 |
| ·抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性的测定 | 第25页 |
| ·统计分析方法 | 第25页 |
| ·结果与分析 | 第25-32页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片中色素含量的变化 | 第26-27页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片和根中 H2O2含量的变化 | 第27-28页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片和根中可溶性蛋白含量的变化 | 第28-29页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片和根中 MDA 含量的变化 | 第29页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片和根中 SOD 活性的变化 | 第29-30页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片和根中 POD 活性的变化 | 第30页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片和根中 CAT 活性的变化 | 第30-31页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片和根中 APX 活性的变化 | 第31-32页 |
| ·讨论与结论 | 第32-35页 |
| ·NaCl 胁迫对光合色素的影响 | 第32-33页 |
| ·NaCl 胁迫对 H2O2 含量的影响 | 第33页 |
| ·NaCl 胁迫对可溶性蛋白含量的影响 | 第33页 |
| ·NaCl 胁迫对 4 种保护酶活性及 MDA 含量的影响 | 第33-35页 |
| 第三章 NaCl 胁迫对两个品种杨树内源激素的影响 | 第35-42页 |
| ·材料与方法 | 第35页 |
| ·试验材料 | 第35页 |
| ·实验试剂 | 第35页 |
| ·实验仪器 | 第35页 |
| ·实验主要试剂配制 | 第35页 |
| ·试验方法 | 第35-36页 |
| ·样品内源激素提取 | 第35页 |
| ·色谱条件 | 第35-36页 |
| ·内源激素含量测定 | 第36页 |
| ·统计分析方法 | 第36页 |
| ·结果与分析 | 第36-39页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片中 ZT 含量的变化 | 第36-37页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片中 GA 含量的变化 | 第37-38页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片中 IAA 含量的变化 | 第38页 |
| ·NaCl 胁迫下杨树组培苗叶片中 iPA 含量的变化 | 第38-39页 |
| ·NaCl 胁迫对杨树组培苗叶片中 ABA 含量的影响 | 第39页 |
| ·讨论与结论 | 第39-42页 |
| 第四章 NaCl 胁迫对 895 杨超微结构的影响 | 第42-49页 |
| ·材料与方法 | 第42页 |
| ·试验材料 | 第42页 |
| ·实验试剂 | 第42页 |
| ·实验仪器 | 第42页 |
| ·实验主要试剂配制 | 第42页 |
| ·试验方法 | 第42页 |
| ·结果与分析 | 第42-47页 |
| ·杨树茎段扫描电镜观察 | 第42-43页 |
| ·杨树上部叶片扫描电镜观察 | 第43-44页 |
| ·杨树下部叶片扫描电镜观察 | 第44页 |
| ·杨树上部叶片透射电镜观察 | 第44页 |
| ·杨树下部叶片透射电镜观察 | 第44-47页 |
| ·结论与讨论 | 第47-49页 |
| 第五章 杨树胞外蛋白双向电泳体系的建立 | 第49-61页 |
| ·材料与方法 | 第49-50页 |
| ·试验材料 | 第49页 |
| ·实验试剂 | 第49页 |
| ·实验仪器 | 第49页 |
| ·实验主要试剂配制 | 第49-50页 |
| ·试验方法 | 第50-54页 |
| ·杨树叶片胞外蛋白提取 | 第50-51页 |
| ·杨树茎段胞外蛋白提取 | 第51-52页 |
| ·杨树胞外蛋白质电泳 | 第52-54页 |
| ·杨树单向凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第52页 |
| ·杨树蛋白质双向电泳 | 第52-53页 |
| ·凝胶染色 | 第53-54页 |
| ·数据处理与电泳图谱分析 | 第54页 |
| ·结果与分析 | 第54-58页 |
| ·杨树叶片细胞壁组织细胞学观察 | 第54页 |
| ·单向电泳上样量的选择 | 第54-55页 |
| ·胞外蛋白 SDS-PAGE 分析 | 第55-56页 |
| ·杨树叶片细胞壁不同破碎方法的比较 | 第56-57页 |
| ·杨树叶片、茎段胞外体蛋白双向电泳初探 | 第57-58页 |
| ·结论与讨论 | 第58-61页 |
| ·样品的制备 | 第58-59页 |
| ·胶浓度的确定 | 第59页 |
| ·上样量的确定 | 第59页 |
| ·染色方法的确定 | 第59页 |
| ·双向电泳的重复性 | 第59-60页 |
| ·差异蛋白的表达 | 第60-61页 |
| 第六章 全文结论 | 第61-63页 |
| ·主体结论 | 第61-62页 |
| ·创新点 | 第62页 |
| ·展望与不足之处 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
