摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
引言 | 第10-12页 |
1 绪论 | 第12-25页 |
·IgY研究进展 | 第12-19页 |
·IgY的特性 | 第12-14页 |
·IgY的作用机理 | 第14-15页 |
·IgY的应用 | 第15-19页 |
·肠道黏膜免疫及鼠伤寒沙门氏菌感染小鼠免疫应答的研究进展 | 第19-24页 |
·肠道黏膜免疫系统 | 第19-21页 |
·鼠伤寒沙门氏菌感染小鼠的免疫应答过程 | 第21-24页 |
·本研究的目的、意义及主要工作 | 第24-25页 |
2 抗鼠伤寒沙门氏菌IgY的制备和分离纯化及其特性研究 | 第25-39页 |
·前言 | 第25页 |
·实验材料及设备 | 第25-29页 |
·实验动物 | 第25页 |
·菌种 | 第25页 |
·试剂 | 第25-26页 |
·仪器 | 第26-27页 |
·溶液配置 | 第27-29页 |
·实验方法 | 第29-32页 |
·鼠伤寒沙门氏菌的培养与定量 | 第29页 |
·免疫原的制备 | 第29页 |
·蛋鸡免疫 | 第29-30页 |
·IgY的分离、纯化及制备 | 第30页 |
·酶联免疫吸附实验(ELISA)检测抗体效价 | 第30-31页 |
·聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)检测IgY纯度 | 第31-32页 |
·IgY抑菌效果的研究 | 第32页 |
·实验结果与分析 | 第32-37页 |
·最适抗原包被浓度的确定 | 第32-33页 |
·IgY效价随免疫时间的变化 | 第33-34页 |
·IgY分离纯化过程中纯度的变化 | 第34-35页 |
·特异性IgY的体外抑菌效果 | 第35-37页 |
·讨论 | 第37-38页 |
·小结 | 第38-39页 |
3 鼠伤寒沙门氏菌特异性IgY对肠道感染小鼠黏膜免疫的调节作用 | 第39-52页 |
·前言 | 第39页 |
·实验材料和设备 | 第39-40页 |
·实验动物 | 第39页 |
·菌种 | 第39页 |
·试剂 | 第39-40页 |
·仪器 | 第40页 |
·溶液配置 | 第40页 |
·实验方法 | 第40-43页 |
·动物实验方案 | 第40-41页 |
·小鼠体重及死亡率变化 | 第41页 |
·小鼠肠道组织病理学检测 | 第41页 |
·小鼠小肠肠道上皮细胞超微结构观察 | 第41页 |
·特异性IgY对肠道感染小鼠肠道中髓过氧化物酶(MPO)含量的影响 | 第41-42页 |
·免疫组织化学法检测特异性IgY对肠道感染小鼠T淋巴细胞及亚型增殖的影响 | 第42-43页 |
·统计分析 | 第43页 |
·实验结果与分析 | 第43-49页 |
·特异性IgY对攻毒小鼠体重及存活率的影响 | 第43-44页 |
·特异性IgY对小鼠攻毒后肠道病理状态的影响 | 第44-45页 |
·特异性IgY对肠道感染小鼠小肠上皮细胞超微结构的影响 | 第45-46页 |
·特异性IgY对肠道感染小鼠髓过氧化物酶(MPO)含量的影响 | 第46-47页 |
·特异性IgY对肠道感染小鼠黏膜免疫应答中T淋巴细胞及亚型增殖的调节作用 | 第47-49页 |
·讨论 | 第49-51页 |
·小结 | 第51-52页 |
4 特异性IgY对巨噬细胞吞噬作用及产生炎症因子NO的影响 | 第52-62页 |
·前言 | 第52页 |
·实验材料和设备 | 第52-54页 |
·菌株和细胞株 | 第52页 |
·试剂 | 第52-53页 |
·实验仪器 | 第53页 |
·溶液配置 | 第53-54页 |
·实验方法 | 第54-55页 |
·细菌的培养 | 第54页 |
·巨噬细胞的培养 | 第54页 |
·异硫氰酸荧光素(FITC)标记鼠伤寒沙门氏菌 | 第54页 |
·FITC标记的鼠伤寒沙门氏菌侵染巨噬细胞作用时间的选择 | 第54-55页 |
·特异性IgY对巨噬细胞吞噬作用的影响 | 第55页 |
·特异性IgY对巨噬细胞炎症因子NO表达量的影响 | 第55页 |
·实验结果与分析 | 第55-59页 |
·异硫氰酸荧光素(FITC)标记鼠伤寒沙门氏菌的标记率 | 第55-56页 |
·巨噬细胞对FITC标记鼠伤寒沙门氏菌的吞噬率随时间的变化 | 第56-58页 |
·特异性IgY对巨噬细胞吞噬作用的影响 | 第58-59页 |
·特异性IgY对巨噬细胞炎症因子NO表达量的影响 | 第59页 |
·讨论 | 第59-61页 |
·小结 | 第61-62页 |
结论 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-71页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第71-72页 |
致谢 | 第72-73页 |